文献综述 Open Access
Copyright ©The Author(s) 2019. Published by Baishideng Publishing Group Inc. All rights reserved.
世界华人消化杂志. 2019-04-28; 27(8): 515-520
在线出版日期: 2019-04-28. doi: 10.11569/wcjd.v27.i8.515
细胞外囊泡在肝纤维化诊治中的研究进展
赵佳伟, 王玉刚, 施敏
赵佳伟, 江苏大学医学院 江苏省镇江市 212000
赵佳伟, 王玉刚, 施敏, 上海交通大学医学院附属同仁医院消化内科 上海市 213300
赵佳伟, 硕士研究生, 主要从事肝纤维化和急性肝衰竭的研究.
基金项目: 国家自然科学基金面上项目, Nos. 81472242, 81570549.
作者贡献分布: 本文综述由赵佳伟完成; 王玉刚与施敏审校.
通讯作者: 施敏, 副主任医师, 213300, 上海市长宁区仙霞路1111号, 上海交通大学医学院附属同仁医院消化内科. sm1790@shtrhospital.com
收稿日期: 2018-10-17
修回日期: 2018-11-26
接受日期: 2018-12-30
在线出版日期: 2019-04-28

细胞外囊泡(extracellular vesicles, EVs)介导细胞间的物质信号交流参与肝纤维化的发生发展, 肝星状细胞(hepatic stellate cells, HSCs)和肝实质细胞分泌的EVs携带microRNA能激活邻近的HSCs, 上调TGF-β信号通路, 导致结缔组织生长因子表达增加, 最终导致α-平滑肌肌动蛋白和胶原蛋白分泌增加, 从而介导肝纤维化. 另一方面, 健康群体和间充质干细胞分泌的EVs对于肝纤维化起到一定的治疗作用. 本文就EVs的结构、来源、功能及介导肝纤维化的发生发展与诊治的机制作一综述.

关键词: 细胞外囊泡; 肝纤维化; MicroRNA; 肝星状细胞

核心提要: 本文简要概述了细胞外囊泡的结构、来源和功能, 着重阐述了细胞外囊泡促进肝纤维化发生发展的机制和细胞外囊泡在肝纤维化中的诊断和治疗价值, 并提出了对未来进一步研究的展望.


引文著录: 赵佳伟, 王玉刚, 施敏. 细胞外囊泡在肝纤维化诊治中的研究进展. 世界华人消化杂志 2019; 27(8): 515-520
Role of extracellular vesicles in diagnosis and treatment of liver fibrosis
Jia-Wei Zhao, Yu-Gang Wang, Min Shi
Jia-Wei Zhao, School of Medicine, Jiangsu University, Zhenjiang 212000, Jiangsu Province, China
Jia-Wei Zhao, Yu-Gang Wang, Min Shi, Department of Gastroenterology, Shanghai Tongren Hospital, Shanghai Jiao Tong University School of Medicine, Shanghai 213300, China
Supported by: National Natural Science Foundation of China, No. 81472242 and No. 81570549.
Corresponding author: Min Shi, Associate Chief Physician, Department of Gastroenterology, Shanghai Tongren Hospital, Shanghai Jiao Tong University School of Medicine, 1111 Xianxia Road, Changning District, Shanghai 213300, China.sm1790@shtrhospital.com
Received: October 17, 2018
Revised: November 26, 2018
Accepted: December 30, 2018
Published online: April 28, 2019

Extracellular vesicles (EVs) mediate the intercellular communication of substances and are involved in the development of liver fibrosis. The vesicles secreted by hepatic stellate cells (HSCs) and hepatic parenchymal cells carry microRNAs to activate adjacent HSCs and up-regulate TGF-β signaling pathway. This results in increased expression of connective tissue growth factor, which eventually leads to the expression of α-smooth muscle actin and collagen, thereby mediating liver fibrosis. On the other hand, EVs secreted by healthy population and mesenchymal stem cells play a therapeutic role in liver fibrosis. This article reviews the structure, origin, and function of EVs as well as their role in the occurrence, development, diagnosis, and treatment of liver fibrosis.

Key Words: Extracellular vesicle; Liver fibrosis; MicroRNA; Hepatic stellate cells


0 引言

细胞外囊泡(extracellular vesicles, EVs)是来源于细胞内多囊泡体的纳米级囊泡, 能够携带核酸、蛋白质等物质, 参与细胞间的信息交流. 自发现以来, EVs已被证实在多种生理病理过程中发挥重要作用[1-4]. {van Niel, 2018 #52;Tkach, 2016 #49}肝纤维化是一个动态的过程, 其特征是细胞外基质(extracellular matrix, ECM)或瘢痕的堆积, 是由多种病因导致的慢性肝损伤引起的, 包括慢性病毒感染、酒精性肝病, 非酒精性脂肪肝的进展形式. 其中肝星状细胞(hepatic stellate cells, HSCs)的激活是肝纤维化的主要原因, HSCs受到多种刺激后被激活, 分泌大量ECM[5-8]. EVs包含有多种活性物质, 包括蛋白质、脂质、mRNA和microRNA等, 可以调节受体细胞内的信号通路, 其中之一发挥主要作用的是其携带的microRNA, microRNA是由基因编码的长度约22-23 nt的单链RNA分子, 参与基因的转录后表达调控, 通过与靶基因mRNA的3非翻译区(un-translated region, UTR)相互作用来调节基因表达[9-12]. EVs内携带的microRNA能够对肝纤维化的发生发展起到了重要的调节作用, 但是具体的作用机制还不明了[13-16]. 本文综述了EVs对于肝纤维化的主要研究进展其在肝纤维化发生诊治中的作用.

1 细胞外囊泡的结构、来源及功能

EVs是膜性纳米级囊泡, 由跨膜蛋白和包围胞浆蛋白和RNA的脂质双层组成, 直径为100-1000 nm, EVs可以从细胞质膜中以萌芽方式形成并释放出来[17]. 通过透射电镜观察EVs通常表现为茶托型或一侧凹陷的半球形, Western blot检测EVs中的相关蛋白, 可以发现EVs多表达CD9、C63、Tsg101和Alix等蛋白. EVs的生物合成过程起始于多囊泡体的内陷形成管腔内囊泡, 接着多囊泡体和质膜融合, 将管腔内囊泡释放到ECM, 这些被释放到细胞外基质的囊泡就被称为EVs. Rab家族蛋白能够调控EVs的分泌, 沉默Rab27a或者Rab27b会抑制多囊泡体与质膜的连接位点[18].

科学家最初是在绵羊网织红细胞的成熟过程中发现了EVs, EVs从细胞中被分泌被认为可能与细胞膜功能丧失有关[19]. 多年后, 人们发现EVs是用于排泄细胞内代谢废物和细胞表面的废弃蛋白[20]. 之后的几年, EVs被发现具有抗原提呈功能, 参与机体的免疫反应. 近几年来, 有研究表明, EVs可以由多种不同的细胞分泌, 依据其不同的来源, EVs在不同的生理过程中发挥作用. 人类和小鼠的B淋巴细胞都能够分泌EVs, 释放MHC-Ⅱ类分子诱导T细胞的反应; 树突状细胞也能够分泌EVs, 它们分泌的EVs含有MHC-Ⅰ和MHC-Ⅱ类分子, 能够抑制小鼠肿瘤细胞的生长[21]; 间质干细胞分泌的EVs能够减少心肌细胞缺血再灌注损伤[22]; 人肝干细胞来源的EVs能够预防肾纤维化[23]; 除此之外, EVs还在大多数体液如血液、尿液和腹水中发现[24].

较为重要的是有研究表明EVs含有RNA, 包括mRNA和microRNA等核酸内容物, 并且这些核酸内容物可以被转运到其他细胞中, 起到遗传物质交换的作用. 现在, EVs的细胞间信号交流作用越发受到人们的注意, 总之, EVs对于临床疾病的的诊治有着巨大的潜力, 为疾病的诊疗提供了新的方向.

2 细胞外囊泡促进肝纤维化的发展

肝纤维化的发生发展受到多因素的影响, 细胞内蛋白和核酸信号调节着以TGF-β为主的与肝纤维化相关的信号通路. 细胞分泌的EVs所携带的蛋白核酸分子对肝纤维化的发展起着重要的作用. 肝脏损伤后, HSCs会被激活变为肌纤维母细胞, 分泌更多的促纤维化的物质如α-SMA和胶原蛋白, 它们分别通过促进伤口收缩和提供ECM来促进修复. 在慢性损伤期间, 胶原纤维不断地沉积, 损害正常的肝功能. 减少基质产生或干预HSCs降解基质有望成为抗纤维化策略[25].

HSCs分泌的EVs携带有结缔组织生长因子(connective tissue growth factor, CTGF/CCN2)蛋白或者CCN2的mRNA. 研究人员发现在激活态的或者是转染了CCN2-GFP基因的HSCs中CCN2或CCN2 mRNA的含量或升高. 在用染料标记或GFP示踪条件下, 研究人员能够看到这些由HSCs分泌的EVs能够被激活态和静止状态下的HSCs内吞, 导致ECM分泌增多, 继而加速慢性肝病中的纤维化过程. 从而能看出EVs内含有的信号物质成为了肝纤维化发病的成因之一[26]. microRNA是由基因编码的长度约22-23 nt的单链RNA分子, 参与基因的转录后表达调控, 对肝纤维化有着重要的调节作用. EVs中的microRNA依据其种类的不同对肝纤维化有不同的作用. 一部分microRNA能够抑制纤维化的发展, 例如, 在非损伤肝脏或静止状态下的HSCs中可以检测到高水平的microRNA-214, 而在纤维化的肝脏或是激活状态的HSCs中microRNA-214的水平大大降低. 通过诱导肝星形细胞中CCN2的表达, 发现促进纤维化的原因是由于microRNA-214表达的减少, 而microRNA-214能够与CCN2的mRNA的3'UTR结合抑制CCN2及其下游蛋白的表达, microRNA-214表达的下降会促进肝纤维化的进展. 重要的是, microRNA-214存在于肝星形细胞的EVs中, 它可以通过EVs的分泌被运输到邻近的其他HSCs中, 进而调节CCN2相关的纤维化信号通路[27]. 深层次地, 研究人员发现microRNA-214是dynamin 3相反链(DNM3os)的产物, 它可以直接抑制CCN2 mRNA的表达. 更进一步地研究表明转录因子Twist1通过促进microRNA-214的转录进而抑制CCN2的表达. Twist1在纤维化肝脏中的HSCs或体外激活状态下的HSCs中的表达均受到抑制. 未激活状态的的HSCs分泌的EVs含有高水平的Twist1. EVs中Twist1在邻近的HSCs之间穿梭, 抑制受体细胞microRNA-214的转录、CCN2及其下游效应因子的表达. 此外, HSCs中的microRNA-214也受到肝细胞来源的EVs的调节, 表明EVs Twist1的转移可以发生在不同类型的细胞之间. 最后, 来自肝纤维化小鼠的EVs中Twist1、microRNA-214或CCN2的水平反映了肝纤维化的水平, 突出了这些成分作为新的肝纤维化生物标志物的潜在用途[28].

丙肝病毒(hepatitis C virus, HCV)感染的肝实质细胞能够分泌含有microRNA-19a的EVs, 这些囊泡能被邻近的肝星形细胞内吞激活HSCs, microRNA-19a靶向作用于HSCs中的SOCS-STAT3信号通路, 激活TGF-β信号通路, 增加促纤维化基因的表达. 并且研究人员发现HCV感染的肝纤维化患者血清中的microRNA-19a水平高于健康人群或非HCV感染的肝病患者血清中的水平[29]. 在肝损伤中, EVs介导TLR3活化, 继而增强γδ T细胞产生IL-17A而加重肝纤维化. 研究人员发现由CCl4诱导的早期肝纤维化小鼠相较于TLR3敲除的小鼠, 能够分泌更高水平的白细胞介素17(IL-17). 在体外实验中同样发现, 用CCl4处理后的肝细胞分泌的EVs作用于HSCs, IL-17A、IL-1B和IL-23的表达都上升了, 但是这一现象在TLR3敲除的HSCs中却没有出现. 因此, TLR3可能是一个新的用于治疗肝纤维化靶点[30]. 棕榈酸(PA, palmitic acid)处理能增强了肝细胞EVs的产生, 并改变了它们的外显子microRNA谱, 当HSCs与来自PA处理的肝细胞EVs培养时, 与来自对照组处理的肝细胞的EVs相比, PA处理组的纤维化发展有关的基因显著增加. 在从单纯性脂肪变性到非酒精性脂肪性肝炎的过程中, EVs可能在肝细胞和HSCs之间的联系起到重要的作用[31]. 有研究人员发现血小板衍生生长因子(platelet-derived growth factor, PDGF)受体α(PDGFRα)以SHP2依赖的方式富集于PDGF-BB处理的HSCs来源的EVs中, 并且这些PDGFRα富集的EVs参与肝纤维化的发展. 与健康人相比, 肝纤维化患者血清EVs的PDGFRα水平升高. 来源于PDGFRα过表达细胞的EVs促进了体外HSCs迁移和体内肝纤维化. 最后, 对四氯化碳给药的小鼠给予SHP2抑制剂SHP099可抑制血清EVs中PDGFRα的富集并减少肝纤维化[32].

总的来说, 以肝细胞和HSCs为主多种细胞分泌的EVs, 能够促进HSCs细胞间的信息交流, 激活HSCs分泌ECM等促进肝纤维化的相关蛋白, 引起或加重胶原的成绩, 加重肝纤维化.

3 细胞外囊泡在肝纤维化诊断中的作用

基于EVs与肝纤维化之间种种关系的发现, 研究人员认为EVs可以用于肝纤维化的无创性诊断. 相较于肝脏活检或是影像学检查, 利用EVs的液体活检能够减少对病人的创伤并提高准确性.

有研究人员进行了一项病例对照研究, 发现血清中可溶性的CD81与慢性HCV感染的病人血清炎症水平和肝脏纤维化程度相关. 慢性丙肝患者血清可溶性CD81水平明显高于健康组和治愈患者组[33]. 还有研究人员将轻度丙型肝炎患者和健康对照组相比, 丙型肝炎患者的血液中T细胞EVs含量升高. 利用质谱、荧光激活细胞分类分析和功能阻断抗体等技术显示出CD147/Emmprin作为CD81 T细胞EVs激活HSCs的候选跨膜分子. 因此, 循环T细胞EVs是肝纤维化新的诊断标志物[34]. 慢性乙型和HCV感染与HSCs向的激活有关, 为了降低诊断带来的创伤, 提高诊断的特异性, 研究人员通过收集早期肝纤维化患者的血样本, 构建了肝纤维化病人与活化的小鼠原代HSCs的microRNA表达谱, 发现纤维化患者EVs中microRNA的表达与肝纤维化的病程相关, 这些microRNAs可以用作肝纤维化早期阶段的标志物[35]. 除了血液之外, 也有研究人员想要从尿液中的EVs中找到具有差异性的蛋白质来对肝脏疾病作出无创性的诊断. 他们从D-半乳糖胺处理的大鼠的尿样中提取到了细胞外的囊泡, 并进行了蛋白质组学的分析, 鉴定出28种以前未报道于这些囊泡的蛋白质. 最后研究人员提出了一些蛋白质, 如Cd26、Cd81、Slc3A1和Cd10, 这些蛋白质被发现在尿液囊泡中有不同于某些分析模型的表达, 作为肝损伤的潜在生物标志物[36].

利用血液或尿液中的EVs进行肝纤维化的无创性诊断具有较高的安全性和特异性, 因此EVs在肝纤维化的诊断中起到了重要的作用.

4 细胞外囊泡在肝纤维化治疗中的作用

在肝纤维化的治疗方面, 研究发现EVs有较好的治疗潜力. 随着间充质干细胞(embryonic stem cells-derived mesenchymal stem cell, ES-MSC)治疗的不断发展, 其分泌的EVs也受到了研究人员极大的关注. 利用ES-MSC的EVs对肝纤维化小鼠或大鼠模型治疗也起到了与干细胞治疗相似的作用.

人脐带间质干细胞(human umbilical cord mesenchy-mal stem cell-Exosome, hucMSC-Ex)来源的EVs移植入纤维化肝脏中, 可以恢复肝功能, 改善肝纤维化. 与对照组相比, hucMSC-Ex产生的EVs处理过后, 肝脏质地变得柔软, Ⅰ型和Ⅲ型胶原水平大幅度下降, 降低了血清天冬氨酸转氨酶的水平, 同时血清TGF-β1的水平也显著下降. 在体外实验中研究人员发现, 在脐带间质干细胞EVs处理过后, 细胞内与上皮间质转化(epithelial to mesenchymal transition, EMT)相关的蛋白E-cadherin阳性细胞增加, N-cadherin和vimentin阳性细胞减少, 更有甚者, 脐带间质干细胞能够逆转由人重组TGF-β1造成上皮间质转化相关标志物的表达[37]. 另一项研究表明绒毛膜CP-MSCs能够在CCl4引起大鼠肝纤维化模型中取得很好的疗效, 进一步研究发现, CP-MSCs分泌的EVs携带microRNA-125b, 能够抑制Hh(hedgehog, Hh)信号通路, 从而减轻肝纤维化, 促进肝脏的再生[38]. 同样的, 脂肪间充质干细胞(adipose-derived mesenchymal stem cells, ADSC)分泌的EVs可以被利用来向HSCs递送microRNAs. ADSC被工程化以过表达microRNA-181-5p, 体外分析证实, microRNA-181-5P ADSC通过分泌EVs来实现microRNA-181-5P的转移, 携带有microRNA-181-5p的EVs能够被运输到大鼠的HSCs, 被该细胞内吞, 接着microRNA-181-5p能够下调Stat3和Bcl-2的信号通路, 并且激活HST-T6细胞的自噬, 继而减少肝星形细胞产生的I型胶原、纤连蛋白、波形蛋白、α-SMA等致纤维化物质的产生, 减轻肝脏的纤维化. 此外, 在TGF-β1诱导的HST-T6细胞中, 加入microRNA-181-5p-ADSC的EVs后, 与对照组相比, 抑制了纤维化基因的表达[39]. 人胚胎干细胞来源的ES-MSC来源的EVs在硫代乙酰胺(thioacetamide, TAA)诱导的大鼠慢性肝损伤中显示出与亲代细胞相当的免疫调节活性和并能改善肝硬化. 基因表达分析还显示, 胶原酶、抗凋亡基因和抗炎细胞因子表达上调, 主要纤维化因子、促凋亡基因和促炎细胞因子表达下调. 因此, ES-MSC EVs可以调节TAA损伤小鼠模型中的促炎和抗炎细胞因子[40].

microR-199a-5p可以抑制野生型小鼠CCN2基因3'端UTR而抑制CCN2的表达, microR-199a-5p主要表达于静止的小鼠HSCs中, 肝纤维化小鼠肝脏或活化的小鼠原代HSCs中CCN2表达上调与microRNA-199a-5p下调有关, 将静止状态下小鼠肝星形细胞中含有microRNA-199a-5p的EVs输送到激活状态下的小鼠肝星形细胞中, 发现CCN2 3'端UTR的活动受到了抑制, 减少了α-SMA或胶原蛋白的产生. 因此, 通过microRNA-199a-5p抑制CCN2可以部分解释静止HSCs中低水平的纤维原性基因表达, 并且在激活HSCs中导致抑制性基因表达. 这为肝纤维化的治疗提供了潜在的靶点[41]. 在小鼠中, microRNA-34c、-151-3p、-483-5p、-532-5p和-687在正常小鼠中的EVs中的表达比肝纤维化小鼠中的EVs高, microRNA的模拟物能够抑制活化了的HSCs中的纤维基因表达. 同样, 健康人血清EVs减轻了HSCs的激活表型, 健康人群血清中分离的EVs中的microR-34c、-151-3p、-483-5p或-532-5p均高于肝纤维化患者EVs中的. 因此, 来自正常健康个体的血清EVs天生具有抗纤维发生和抗纤维化的特性, 并且含有对活化的HSCs或损伤的肝细胞具有治疗作用的microRNAs[16].

利用EVs治疗肝纤维化的研究主要着围绕ES-MSC展开, EVs拥有与其来源细胞相似的功能, ES-MSC来源的EVs能够对纤维化的肝脏起到修复作用, 从而减轻肝纤维化.

5 结论

EVs对肝纤维化的发生发展和诊治可能具有重要的意义. EVs是由细胞分泌的纳米级囊泡, 其内部包含了多种活性物质, 包括蛋白质、脂质、mRNA和microRNA等. EVs通过与靶细胞的融合介导细胞间的相互交流, 并调控受体细胞内的信号通路, 改变细胞的表型与功能. 研究人员期望基于此开发出无创诊断方法, 不论是局部组织还是循环血液中囊泡表面标志蛋白的表达量, 或是囊泡内包含microRNA的定量, 都有望成为肝纤维化诊断新标志物. 更进一步地, 研究人员能够利用这些特异性的标志物设计出靶向药物, 从而对肝纤维化进行更加精准化的治疗与预防.

然而, 以上所讨论的种种可能还存在着一些挑战, 我们需要更好地理解EVs发挥作用的分子机制. 其中一个重要的挑战, 是需要开发体内控制囊泡分泌的技术, 以此来规避致病囊泡的产生, 增加具有治疗作用的囊泡的分泌. 另一个主要的挑战是需要我们理解EVs的生理功能, 精确地确定在体内细胞分泌的囊泡是如何与什么类型的细胞优先相互作用. 但不管怎样, 我们越来越多地了解囊泡与肝脏细胞和组织相互作用的机制, 以及它们在各种条件下作为肝纤维化治疗的潜在用途, 为未来的研究提供了令人兴奋的线索.

学科分类: 胃肠病学和肝病学

手稿来源地: 上海市

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编辑: 崔丽君 电编: 张砚梁

1.  Tkach M, Théry C. Communication by Extracellular Vesicles: Where We Are and Where We Need to Go. Cell. 2016;164:1226-1232.  [PubMed]  [DOI]
2.  Colao IL, Corteling R, Bracewell D, Wall I. Manufacturing Exosomes: A Promising Therapeutic Platform. Trends Mol Med. 2018;24:242-256.  [PubMed]  [DOI]
3.  Shao H, Im H, Castro CM, Breakefield X, Weissleder R, Lee H. New Technologies for Analysis of Extracellular Vesicles. Chem Rev. 2018;118:1917-1950.  [PubMed]  [DOI]
4.  van Niel G, D'Angelo G, Raposo G. Shedding light on the cell biology of extracellular vesicles. Nat Rev Mol Cell Biol. 2018;19:213-228.  [PubMed]  [DOI]
5.  Ma PF, Gao CC, Yi J, Zhao JL, Liang SQ, Zhao Y, Ye YC, Bai J, Zheng QJ, Dou KF, Han H, Qin HY. Cytotherapy with M1-polarized macrophages ameliorates liver fibrosis by modulating immune microenvironment in mice. J Hepatol. 2017;67:770-779.  [PubMed]  [DOI]
6.  Zhang K, Han X, Zhang Z, Zheng L, Hu Z, Yao Q, Cui H, Shu G, Si M, Li C, Shi Z, Chen T, Han Y, Chang Y, Yao Z, Han T, Hong W. The liver-enriched lnc-LFAR1 promotes liver fibrosis by activating TGFβ and Notch pathways. Nat Commun. 2017;8:144.  [PubMed]  [DOI]
7.  Tsuchida T, Friedman SL. Mechanisms of hepatic stellate cell activation. Nat Rev Gastroenterol Hepatol. 2017;14:397-411.  [PubMed]  [DOI]
8.  Hyun J, Wang S, Kim J, Rao KM, Park SY, Chung I, Ha CS, Kim SW, Yun YH, Jung Y. MicroRNA-378 limits activation of hepatic stellate cells and liver fibrosis by suppressing Gli3 expression. Nat Commun. 2016;7:10993.  [PubMed]  [DOI]
9.  Ogawa T, Enomoto M, Fujii H, Sekiya Y, Yoshizato K, Ikeda K, Kawada N. MicroRNA-221/222 upregulation indicates the activation of stellate cells and the progression of liver fibrosis. Gut. 2012;61:1600-1609.  [PubMed]  [DOI]
10.  Noetel A, Kwiecinski M, Elfimova N, Huang J, Odenthal M. microRNA are Central Players in Anti- and Profibrotic Gene Regulation during Liver Fibrosis. Front Physiol. 2012;3:49.  [PubMed]  [DOI]
11.  Griffiths-Jones S. The microRNA Registry. Nucleic Acids Res. 2004;32:D109-D111.  [PubMed]  [DOI]
12.  Bartel DP. MicroRNAs: target recognition and regulatory functions. Cell. 2009;136:215-233.  [PubMed]  [DOI]
13.  Borrelli DA, Yankson K, Shukla N, Vilanilam G, Ticer T, Wolfram J. Extracellular vesicle therapeutics for liver disease. J Control Release. 2018;273:86-98.  [PubMed]  [DOI]
14.  Szabo G, Momen-Heravi F. Extracellular vesicles in liver disease and potential as biomarkers and therapeutic targets. Nat Rev Gastroenterol Hepatol. 2017;14:455-466.  [PubMed]  [DOI]
15.  Royo F, Falcon-Perez JM. Liver extracellular vesicles in health and disease. J Extracell Vesicles. 2012;1.  [PubMed]  [DOI]
16.  Chen L, Chen R, Kemper S, Cong M, You H, Brigstock DR. Therapeutic effects of serum extracellular vesicles in liver fibrosis. J Extracell Vesicles. 2018;7:1461505.  [PubMed]  [DOI]
17.  Théry C, Ostrowski M, Segura E. Membrane vesicles as conveyors of immune responses. Nat Rev Immunol. 2009;9:581-593.  [PubMed]  [DOI]
18.  Ostrowski M, Carmo NB, Krumeich S, Fanget I, Raposo G, Savina A, Moita CF, Schauer K, Hume AN, Freitas RP, Goud B, Benaroch P, Hacohen N, Fukuda M, Desnos C, Seabra MC, Darchen F, Amigorena S, Moita LF, Thery C. Rab27a and Rab27b control different steps of the exosome secretion pathway. Nat Cell Biol. 2010;12:19-30.  [PubMed]  [DOI]
19.  Johnstone RM, Adam M, Hammond JR, Orr L, Turbide C. Vesicle formation during reticulocyte maturation. Association of plasma membrane activities with released vesicles (exosomes). J Biol Chem. 1987;262:9412-9420.  [PubMed]  [DOI]
20.  Johnstone RM, Mathew A, Mason AB, Teng K. Exosome formation during maturation of mammalian and avian reticulocytes: evidence that exosome release is a major route for externalization of obsolete membrane proteins. J Cell Physiol. 1991;147:27-36.  [PubMed]  [DOI]
21.  Zitvogel L, Regnault A, Lozier A, Wolfers J, Flament C, Tenza D, Ricciardi-Castagnoli P, Raposo G, Amigorena S. Eradication of established murine tumors using a novel cell-free vaccine: dendritic cell-derived exosomes. Nat Med. 1998;4:594-600.  [PubMed]  [DOI]
22.  Lai RC, Arslan F, Lee MM, Sze NS, Choo A, Chen TS, Salto-Tellez M, Timmers L, Lee CN, El Oakley RM, Pasterkamp G, de Kleijn DP, Lim SK. Exosome secreted by MSC reduces myocardial ischemia/reperfusion injury. Stem Cell Res. 2010;4:214-222.  [PubMed]  [DOI]
23.  Kholia S, Herrera Sanchez MB, Cedrino M, Papadimitriou E, Tapparo M, Deregibus MC, Brizzi MF, Tetta C, Camussi G. Human Liver Stem Cell-Derived Extracellular Vesicles Prevent Aristolochic Acid-Induced Kidney Fibrosis. Front Immunol. 2018;9:1639.  [PubMed]  [DOI]
24.  Pisitkun T, Shen RF, Knepper MA. Identification and proteomic profiling of exosomes in human urine. Proc Natl Acad Sci USA. 2004;101:13368-13373.  [PubMed]  [DOI]
25.  Charrier A, Chen R, Chen L, Kemper S, Hattori T, Takigawa M, Brigstock DR. Exosomes mediate intercellular transfer of pro-fibrogenic connective tissue growth factor (CCN2) between hepatic stellate cells, the principal fibrotic cells in the liver. Surgery. 2014;156:548-555.  [PubMed]  [DOI]
26.  Chen L, Charrier A, Zhou Y, Chen R, Yu B, Agarwal K, Tsukamoto H, Lee LJ, Paulaitis ME, Brigstock DR. Epigenetic regulation of connective tissue growth factor by MicroRNA-214 delivery in exosomes from mouse or human hepatic stellate cells. Hepatology. 2014;59:1118-1129.  [PubMed]  [DOI]
27.  Chen L, Brigstock DR. Cellular or Exosomal microRNAs Associated with CCN Gene Expression in Liver Fibrosis. Methods Mol Biol. 2017;1489:465-480.  [PubMed]  [DOI]
28.  Chen L, Chen R, Kemper S, Charrier A, Brigstock DR. Suppression of fibrogenic signaling in hepatic stellate cells by Twist1-dependent microRNA-214 expression: Role of exosomes in horizontal transfer of Twist1. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 2015;309:G491-G499.  [PubMed]  [DOI]
29.  Devhare PB, Sasaki R, Shrivastava S, Di Bisceglie AM, Ray R, Ray RB. Exosome-Mediated Intercellular Communication between Hepatitis C Virus-Infected Hepatocytes and Hepatic Stellate Cells. J Virol. 2017;91.  [PubMed]  [DOI]
30.  Seo W, Eun HS, Kim SY, Yi HS, Lee YS, Park SH, Jang MJ, Jo E, Kim SC, Han YM, Park KG, Jeong WI. Exosome-mediated activation of toll-like receptor 3 in stellate cells stimulates interleukin-17 production by γδ T cells in liver fibrosis. Hepatology. 2016;64:616-631.  [PubMed]  [DOI]
31.  Lee YS, Kim SY, Ko E, Lee JH, Yi HS, Yoo YJ, Je J, Suh SJ, Jung YK, Kim JH, Seo YS, Yim HJ, Jeong WI, Yeon JE, Um SH, Byun KS. Exosomes derived from palmitic acid-treated hepatocytes induce fibrotic activation of hepatic stellate cells. Sci Rep. 2017;7:3710.  [PubMed]  [DOI]
32.  Kostallari E, Hirsova P, Prasnicka A, Verma VK, Yaqoob U, Wongjarupong N, Roberts LR, Shah VH. Hepatic stellate cell-derived platelet-derived growth factor receptor-alpha-enriched extracellular vesicles promote liver fibrosis in mice through SHP2. Hepatology. 2018;68:333-348.  [PubMed]  [DOI]
33.  Welker MW, Reichert D, Susser S, Sarrazin C, Martinez Y, Herrmann E, Zeuzem S, Piiper A, Kronenberger B. Soluble serum CD81 is elevated in patients with chronic hepatitis C and correlates with alanine aminotransferase serum activity. PLoS One. 2012;7:e30796.  [PubMed]  [DOI]
34.  Kornek M, Popov Y, Libermann TA, Afdhal NH, Schuppan D. Human T cell microparticles circulate in blood of hepatitis patients and induce fibrolytic activation of hepatic stellate cells. Hepatology. 2011;53:230-242.  [PubMed]  [DOI]
35.  Lambrecht J, Jan Poortmans P, Verhulst S, Reynaert H, Mannaerts I, van Grunsven LA. Circulating ECV-Associated miRNAs as Potential Clinical Biomarkers in Early Stage HBV and HCV Induced Liver Fibrosis. Front Pharmacol. 2017;8:56.  [PubMed]  [DOI]
36.  Conde-Vancells J, Rodriguez-Suarez E, Gonzalez E, Berisa A, Gil D, Embade N, Valle M, Luka Z, Elortza F, Wagner C, Lu SC, Mato JM, Falcon-Perez M. Candidate biomarkers in exosome-like vesicles purified from rat and mouse urine samples. Proteomics Clin Appl. 2010;4:416-425.  [PubMed]  [DOI]
37.  Li T, Yan Y, Wang B, Qian H, Zhang X, Shen L, Wang M, Zhou Y, Zhu W, Li W, Xu W. Exosomes derived from human umbilical cord mesenchymal stem cells alleviate liver fibrosis. Stem Cells Dev. 2013;22:845-854.  [PubMed]  [DOI]
38.  Hyun J, Wang S, Kim J, Kim GJ, Jung Y. MicroRNA125b-mediated Hedgehog signaling influences liver regeneration by chorionic plate-derived mesenchymal stem cells. Sci Rep. 2015;5:14135.  [PubMed]  [DOI]
39.  Qu Y, Zhang Q, Cai X, Li F, Ma Z, Xu M, Lu L. Exosomes derived from miR-181-5p-modified adipose-derived mesenchymal stem cells prevent liver fibrosis via autophagy activation. J Cell Mol Med. 2017;21:2491-2502.  [PubMed]  [DOI]
40.  Mardpour S, Hassani SN, Mardpour S, Sayahpour F, Vosough M, Ai J, Aghdami N, Hamidieh AA, Baharvand H. Extracellular vesicles derived from human embryonic stem cell-MSCs ameliorate cirrhosis in thioacetamide-induced chronic liver injury. J Cell Physiol. 2018;233:9330-9344.  [PubMed]  [DOI]
41.  Chen L, Chen R, Velazquez VM, Brigstock DR. Fibrogenic Signaling Is Suppressed in Hepatic Stellate Cells through Targeting of Connective Tissue Growth Factor (CCN2) by Cellular or Exosomal MicroRNA-199a-5p. Am J Pathol. 2016;186:2921-2933.  [PubMed]  [DOI]