述评 Open Access
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世界华人消化杂志. 2018-05-18; 26(14): 821-826
在线出版日期: 2018-05-18. doi: 10.11569/wcjd.v26.i14.821
调控BCL-6信号干预Tfh细胞分化: 治疗炎症性肠病新策略
刘端勇, 刘雪珂, 鹿秀云, 陈芳, 赵海梅
刘端勇, 鹿秀云, 江西中医药大学科技学院 江西省南昌市 330004
刘端勇, 江西省中药药理学重点实验室 江西省南昌市 330004
刘端勇, 教授, 博士生导师, 研究方向为中药免疫药理.
刘雪珂, 陈芳, 江西中医药大学2017级研究生 江西省南昌市 330004
赵海梅, 江西中医药大学生命科学院 江西省南昌市 330004
ORCID number: 刘端勇 (0000-0003-2855-2811); 赵海梅 (0000-0001-8767-5251).
基金项目: 国家自然科学基金项目, Nos. 81460679, 81760808; 江西省自然科学基金项目, Nos. 20171BAB205088, 20171BAB215057; 江西省卫生厅中医药科研计划, Nos. 2017A248, 20185510, 20185511.
作者贡献分布: 刘端勇与赵海梅共同完成本文; 刘雪珂与陈芳负责文献检索与整理; 鹿秀云负责校对和修改论文
通讯作者: 赵海梅, 副教授, 330004, 江西省南昌市梅岭大道1688号, 江西中医药大学生命科学院. haimei79@163.com
电话: 0791-79118923
收稿日期: 2018-04-03
修回日期: 2018-05-06
接受日期: 2018-05-09
在线出版日期: 2018-05-18

自滤泡辅助性T细胞(follicular helper T cells, Tfh细胞)发现以来, 大量证据表明与炎症性肠病的发病有关. Tfh细胞及其亚群分泌不同细胞因子皆可在炎症性肠病的发病过程中扮演重要角色, 为靶向治疗炎症性肠病提供重要思路. BCL-6信号作为Tfh细胞分化途径上的关键性转录因子, 可调控Tfh细胞的增殖、分化. 在BCL-6信号缺乏时无法产生Tfh细胞, 且BCL-6信号也可通过正性调控、负性调控以及表观遗传学等多种途径有效调控Tfh细胞的分化. 在BCL-6信号调控异常时可导致Tfh的分化异常导致炎症性肠病的发生. 因此可以通过干预BCL-6信号来调控Tfh细胞分化来作为治疗炎症性肠病新的有效靶点.

关键词: BCL-6信号; Tfh细胞; 炎症性肠病; 分化; 调控

核心提要: 炎症性肠病(inflammatory bowel disease, IBD)是慢性非特异性肠道炎症, 免疫状态紊乱是其公认的发病机制之一. BCL-6信号多种途径参与滤泡辅助性T细胞的分化, 并与之一道参与IBD的发病过程, 为IBD的治疗提供了新的思路.


引文著录: 刘端勇, 刘雪珂, 鹿秀云, 陈芳, 赵海梅. 调控BCL-6信号干预Tfh细胞分化: 治疗炎症性肠病新策略. 世界华人消化杂志 2018; 26(14): 821-826
Regulating BCL-6 signaling pathway to control Tfh cell differentiation: A new strategy for treatment of inflammatory bowel disease
Duan-Yong Liu, Xue-Ke Liu, Xiu-Yun Lu, Fang Chen, Hai-Mei Zhao
Duan-Yong Liu, Xiu-Yun Lu, Science and Technology College, Jiangxi University of Traditional Chinese Medicine, Nanchang 330004, Jiangxi Province, China
Duan-Yong Liu, Key Laboratory of Pharmacology of Traditional Chinese Medicine, Nanchang 330004, Jiangxi Province, China
Xue-Ke Liu, Fang Chen, Jiangxi University of Traditional Chinese Medicine, Nanchang 330004, Jiangxi Province, China
Hai-Mei Zhao, School of Life Sciences, Jiangxi University of Traditional Chinese Medicine, Nanchang 330004, Jiangxi Province, China
Supported by: National Natural Science Foundation of China, No. 81460679 and No. 81760808; Jiangxi Provincial Natural Science Foundation, No. 20171BAB205088 and No. 20171BAB215057; Jiangxi Provincial Department of Health Traditional Chinese Medicine Research Plan, No. 2017A248, No. 20185510, and No. 20185511.
Correspondence to: Hai-Mei Zhao, Associate Professor, School of Life Sciences, Jiangxi University of Traditional Chinese Medicine, 1688 Meiling Road, Nanchang 330004, Jiangxi Province, China. haimei79@163.com
Received: April 3, 2018
Revised: May 6, 2018
Accepted: May 9, 2018
Published online: May 18, 2018

Since the discovery of follicular helper T (Tfh) cells, there has been a great deal of evidence that this cell type is involved in the pathogenesis of inflammatory bowel disease. Different cytokines secreted by different subtypes of Tfh cells play an important role in the pathogenesis of inflammatory bowel disease, and thus provide an important approach for the targeted treatment of this disease. As a key transcription factor in Tfh cell differentiation, BCL-6 signaling can regulate the proliferation and differentiation of Tfh cells. In the absence of BCL-6 signaling, Tfh cells cannot be produced. BCL-6 signaling can also effectively regulate Tfh cell differentiation through positive regulation, negative regulation, and epigenetics. Abnormal regulation of BCL-6 signaling can induce abnormal differentiation of Tfh and lead to the occurrence of inflammatory bowel disease. Therefore, Tfh cell differentiation can be regulated by intervention of BCL-6 signaling, which may be used as a new strategy for the treatment of inflammatory bowel disease.

Key Words: BCL-6 signaling; Tfh cells; Inflammatory bowel disease; Differentiation; Regulation


0 引言

自从2000年Schaerli等[1]和Breitfeld等[2]发现滤泡辅助性T细胞(follicular helper T cells, Tfh细胞)以来, 越来越多的证据表明, Tfh或其效应分子的异常是导致包括炎症性肠病(inflammatory bowel disease, IBD)在内的自身免疫性疾病发病的重要因素. 近年来Tfh细胞表面标志、分化、功能与IBD的密切关系已经成为研究的热点.

1 Tfh细胞简介

Tfh细胞是一组能够辅助B细胞产生抗体反应的新型CD4+T细胞亚群, 其主要功能是参与和维持生发中心的形成、为B细胞分泌抗体、抗体的类别转换以及体细胞高频突变过程中提供活化信号[3,4]. 这群高度表达趋化因子受体CXCR5的细胞, 在发育过程逐渐迁移至外周淋巴组织滤泡, 进而促进B细胞分化并诱导其成为浆细胞, 因此Tfh细胞功能、水平关乎正常B细胞分化、成熟和体液反应水平. Tfh细胞水平低下或缺陷则导致体液免疫缺陷, 而亢奋则介导抗体自身产生并诱导自身免疫性疾病, 同时鉴于Tfh细胞在维持和参与生发中心形成中的重要作用, 而这正是许多自身免疫性疾病非淋巴组织中异位生发中心形成的重要原因之一, 提示Tfh细胞积极主动地参与了自身免疫性疾病的发病过程.

2 Tfh细胞分化不同阶段和主要分型

Tfh细胞的来源尚有争议, 但一般认为机体内存在Tfh前体细胞, 其主要分化过程可以分成起始阶段、命运决定阶段和极化阶段等三个阶段[5]. 在起始阶段, 研究表明高表达水平的TCR可以导致T细胞DCs间效应持续的相互作用, 而高水平TCR更容易促使CD4+T细胞分化成Tfh细胞[6], 因此这个过程是由DCs开始执行的. 在命运决定阶段, Tfh前体细胞定位在T-B细胞交界处并大量表达CXCR5, 接触并依赖B细胞, 并在诱导T细胞共刺激分子(inducible T cell co-stimulato, ICOS) /PI3K信号活化的刺激下, 促进Tfh细胞形成. 极化阶段, CXCR5的趋化Tfh细胞在B细胞滤泡区聚集, 同时在IL-21、IL-2等细胞因子和BCL-6/ Blimp-1的参与下, Tfh细胞朝着Tfh1, Tfh2, Tfh10, Tfh17, Tfh21, Tfr等六大类细胞发生功能性分化, 并产生或表达IFN-γ, IL-4, IL-10, IL-17, IL-21, FOXP3等, 导致免疫状态紊乱和炎性损伤. 缺乏上述刺激因素时, Tfh细胞则分化成高表达CXCR5和PD1的GC Tfh细胞, 也可表达CXCR5和GL7 (鼠中) 或者ICOS[7-9].

3 Tfh细胞与IBD发病

尽管Tfh参与自身免疫性疾病的发病机制仅在近十几年兴起, 许多研究表明, 在IBD、类风湿性关节炎、系统性红斑性狼疮等自身免疫性疾病中, Tfh 细胞水平升高且其生物标记物如CXCR5、ICOS、BCL-6、PD-1及CD40L等也高度表达, 同时这些因素与疾病的种类、自身抗体及靶器官损伤的严重程度相关等因素呈正相关[10-12]. 在炎症性肠病的临床研究中发现, 78名克罗恩氏病患者外周血中Tfh细胞(circulating Tfh, CTfh)水平为9.8%, 明显高于正常对照组的5.1%, 且CTfh-Th1、CTfh-Th17两个亚群明显上调, 同时在克罗恩氏病伴结肠癌患者CTfh细胞水平明显1.59倍高于单纯性克罗恩氏病, 提示Tfh细胞和炎症性肠病的发病密切相关[13].

同时Tfh细胞朝Tfh1, Tfh2, Tfh10, Tfh17, Tfh21, Tfr等方向分化发生紊乱后, 最终导致Th细胞极化, Th分化异常或失衡, 诱导异常免疫应答, 介导炎性损伤. 尽管IBD发病机制并不清楚, 但肠道黏膜免疫功能紊乱、肠道环境改变、遗传等因素相互影响在该病发生发展过程发挥重要作用亦为世人所公认. 炎症性肠病是一种自身免疫性疾病, 是多种因素共同作用下导致机体免疫状态发生紊乱, 如UC发病早期可能是Th1反应增强, 而晚期以Th2反应占优势, 同时UC 患者的外周血中 Th17 细胞的表达较正常人明显增高, 高表达Foxp3 的CD4+CD25+ T细胞在患病结肠明显增多. IL-4, IL-10等抑炎因子水平低下导致抑制炎症反应作用降低, 使促炎细胞因子分泌表达增加, 产生恶性循环, 导致 UC 迁延难愈. 故而可见Tfh细胞分化成不同细胞在溃疡性结肠炎发病过程中发挥关键性作用[14]. 由此可见, Tfh细胞在炎症性肠病发病过程中扮演了重要角色. 尽管目前尚未发现有明确针对Tfh细胞的有效治疗炎症性肠病策略, 但Tfh细胞及其亚群在炎症性肠病异常是明确, 因此通过调控关乎Tfh细胞发育和分化水平的关键信号通路影响其细胞水平和分化程度, 能够为炎症性肠病的靶向治疗开辟新的途径.

Tfh细胞是一种专门为B细胞提供帮助的独立CD4 T细胞亚群, 其分化依赖主要调控因子BCL-6(B cell lymphoma 6)的表达, 并具有显著特征[15].

4 BCL-6信号调控Tfh细胞分化

作为Tfh 细胞分化的关键转录因子, BCL-6可促进Tfh细胞增殖、分化, 而转录因子Blimp-1(Blymphocyte induced maturation protein 1, Blimp-1), 即Blimp-1可抑制Tfh细胞分化, 二者相互抑制, 诱导和刺激细胞因子如IL-21, 趋化因子CXCR5, 共刺激分子ICOS等活化, 并建立Tfh细胞分化平衡, 在Tfh细胞发育和生发中心形成与功能维护过程中发挥了关键性作用[16-19].

4.1 BCL-6信号缺乏不能产生Tfh细胞

研究表明, BCL-6表达过度可诱导Tfh细胞发育, 同时降低Th1、Th2、Th17细胞水平; BCL-6表达不足时则导致Tfh细胞比例下降, 而其他Th细胞水平反而增加; 当BCL-6缺乏, Tfh细胞和发生中心不能形成、发育、分化和维持, 提示BCL-6信号在Tfh细胞发育和分化过程中是必不可少, 且其水平高低直接关乎Tfh细胞有无和质量[20,21].

4.2 正性干预BCL-6信号调控Tfh细胞分化

正性干预BCL-6信号调控Tfh细胞分化, 主要途径包括了如下几个方面, 第一, IL-6/IL-6R途径, 其通过信号传导与转录激活因子1(Signal transducers and activators of transcription 1, STAT1)和STAT3介导诱导BCL-6的表达[20]. 第二, ICOS/ICOSL途径, ICOS-ICOSL共刺激所产生的信号促进BCL-6的高表达活化, 并显著增加IL-21表达, 促进了Tfh细胞的分化和生发中心的形成[21]. 第三, IL-21途径, IL-21不仅可以在不受TGF-β限制的情况下促进BCL-6和CXCR5的表达, 也可IL-12的刺激下, 分泌高水平IL-21, 进而上调BCL-6表达促进Tfh细胞分化[22-25]. 第四, 其他途径. 高水平的TGF-β和IL-23也可快速诱导BCL-6、CXCR5和IL-21高度表达, 进而促进Tfh分化[26]. 此外, Tfr细胞是来源Tfh细胞的重要亚群, 具有免疫抑制功能, 外周部分Foxp3+nTreg细胞可高度表达BCL-6, 活化BCL-6-CXCR5信号反应轴, 促使Tfh细胞获得CXCR5表型并逐渐分化成Tfr细胞, 实现Tfh分化成Tfr的全过程[27,28].

4.3 负性干预BCL-6信号调控Tfh细胞分化

通过BCL-6信号负性调控Tfh细胞分化的途径是多方面的, 既有细胞因子、Blinp-1, 又有RNA相关蛋白、STAT家族等共同执行. 第一, 最主要的途径即Blimp-1途径. Blimp-1是抑制Tfh细胞分化最主要的转录因子, 其主要功能在于诱导CD8T细胞和非Tfh细胞的分化与增生, 主要是通过下调CXCP5, ICOS, PD-1表达水平进而多途径地拮抗BCL-6信号, 最终抑制Tfh细胞分化, 所以BCL-6/Blimp-1平衡是Tfh细胞分化方向的决定力量[29-31]. 第二, IL-2途径. IL-2具有抑制Tfh细胞分化的功能, 其主要是通过正性调控STAT5和Blimp-1表达在T细胞分化早期发生抑制作用[32]. 第三, Roquin蛋白途径. Roquin蛋白由Roquin-1(Rc3h1)和Roquin-2 (Rc3h2)两个功能互补的蛋白组成. 在高水平miRNA-101的表达情况下, Roquin蛋白抑制ICOS和OX40的mRNA表达, 导致ICOS和OX40蛋白磷酸化水平低下或失活, 下调BCL-6表达, 进而限制Tfh细胞分化[33,34]. 第四, FoxP1和FoxO1途径, 作为BCL-6信号的上游蛋白, FoxP1和FoxO1均直接抑制BCL-6信号和相关迁移基因的表达, 最终抑制Tfh细胞分化[35,36]. 第五, STAT家族. STAT分子是一类可对Tfh细胞分化实现双向调节的蛋白质分子, 尤其是STAT3, 一方面其可正性调控BCL-6和IL-21的高表达, 另一方面也可促进Blimp-1分子的强力表达, 而BCL-6和Blimp-1对Tfh细胞的分化恰恰正好相反, 提示STAT3可双向调控Tfh细胞分化, 而STAT5则只能单纯地抑制Tfh细胞分化[37,38]. 第六, 其他负性调控信号, 如IL-7信号途径, IL-7信号可通过激活STAT5蛋白, 降低BCL-6的表达, 实现改变Tfh细胞分化方向的作用[39].

4.4 BCL-6/Blimp-1信号表观遗传因素改变调控Tfh细胞分化

基因表达的可遗传性变化是免疫细胞的分化调控机制之一. 目前关于Tfh细胞分化的表观遗传学研究与BCL-6/Blimp-1信号相关的主要集中在组蛋白修饰和microRNA (miRNA)方面的研究. 在组蛋白修饰方面, 目前已经知道与BCL-6能通过竞争同一个基因调控位点达到调控这一基因的表达, 如BCL-6能竞争通过CtBP、BAZF、MTA3等组蛋白与STAT结合, 从而使STAT分子失活, 从而促进Tfh细胞的分化[21]. 然而也有研究中发现BCL-6基因表达受到具有促进基因表达的组蛋白修饰状态(如H3K4me3)的调控[40]. 在miRNA方面, BCL-6可通过抑制Tfh细胞表面miRNA-17-92表达而活化CXCR5, 或者也可通过激活其表面的miRNA-182而促进Tfh细胞的扩增[41,42].

5 干预BCL-6信号调控Tfh细胞分化可能是治疗炎症性肠病的的有效靶点

BCL-6信号途径的重要分子如Blimp-1, IL-2, IL-6, FoxO1, STAT家族等, 在溃疡性结肠炎发病过程中扮演了重要角色. Kim及他的同事等, 采用Blimp-1cko小鼠并用Dextran sodium sulfate (DSS) 诱导复制小鼠结肠炎模型, 发现Blimp-1cko(Blimp-1-/-)小鼠Blimp-1表达水平明显下降的同时, 出现明显的急性炎症症状, 结肠长度缩短, 结肠组织损伤学评分和疾病活动指数明显升高, 伴见IL-1β, IL-6, IL-17A和 IL-23等促炎因子水平升高, 提示Blimp-1水平低下是炎症性肠病的重要特征之一, 并在其发病过程中发挥了重要作用, 同时其采用anti-IL-1β等方法治疗时, 可显著升高Blimp-1, 降低促炎因子的水平并有效缓解了DSS结肠炎小鼠的结肠粘膜损伤[43]. 而也Won等发现DSS诱导结肠炎小鼠FoxO1蛋白表达水平被明显抑制, 同时其FoxP3+Treg细胞水平明显下降, 提示在DSS诱导结肠炎中, FoxO1蛋白诱导的FoxP3+Treg细胞的抑制性功能被限制, 其免疫耐受水平被打破, 从而导致结肠炎的发生, 同时其采用Peroxiredoxin Ⅱ进行治疗, 则发现可明显升高FoxO1蛋白, FoxP3+Treg细胞水平并实现了有效治疗实验性结肠炎的目的[44]. BCL-6信号途径的其他重要分子在炎症性肠病中作用在此就不一一赘述. 上述不难推断, 调控BCL-6/Blimp-1信号途径可能是治疗炎症性肠病的有效治疗策略之一.

6 结论

Tfh细胞的分化与功能是近年来免疫学的研究热点之一, 作为影响其分化的主要途径, BCL-6信号也存在众多因素的干扰, 尤其是处在肠道粘膜中的Tfh细胞, 与肠道菌群及其代谢产物之间的关系, 与其他免疫细胞的互通与对话, 与粘膜屏障功能, 与粘膜局部体液免疫之间关联, 其自身的生长发育, 增殖与凋亡, 其信号通路活化与mRNA及ncRNA等之间的关系都还不是非常清楚, 其在IBD发病中的价值还有待于进一步挖掘. 值得可喜的是, 研究已经明确干预BCL-6信号可以有效治疗IBD, 这为IBD的治疗提供了一个崭新的思路, 围绕着BCL-6蛋白为核心, 探索药物治疗IBD的作用靶点, 又为IBD的新药研发提供了参考.

学科分类: 胃肠病学和肝病学

手稿来源地: 江西省

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编辑:马亚娟 电编:张砚梁

1.  Schaerli P, Willimann K, Lang AB, Lipp M, Loetscher P, Moser B. CXC chemokine receptor 5 expression defines follicular homing T cells with B cell helper function. J Exp Med. 2000;192:1553-1562.  [PubMed]  [DOI]
2.  Breitfeld D, Ohl L, Kremmer E, Ellwart J, Sallusto F, Lipp M, Förster R. Follicular B helper T cells express CXC chemokine receptor 5, localize to B cell follicles, and support immunoglobulin production. J Exp Med. 2000;192:1545-1552.  [PubMed]  [DOI]
3.  Scherm MG, Ott VB, Daniel C. Follicular Helper T Cells in Autoimmunity. Curr Diab Rep. 2016;16:75.  [PubMed]  [DOI]
4.  Vinuesa CG, Linterman MA, Yu D, MacLennan IC. Follicular Helper T Cells. Annu Rev Immunol. 2016;34:335-368.  [PubMed]  [DOI]
5.  Leddon SA, Richards KA, Treanor JJ, Sant AJ. Abundance and specificity of influenza reactive circulating memory follicular helper and non-follicular helper CD4 T cells in healthy adults. Immunology. 2015;146:157-162.  [PubMed]  [DOI]
6.  Tubo NJ, Pagán AJ, Taylor JJ, Nelson RW, Linehan JL, Ertelt JM, Huseby ES, Way SS, Jenkins MK. Single naive CD4+ T cells from a diverse repertoire produce different effector cell types during infection. Cell. 2013;153:785-796.  [PubMed]  [DOI]
7.  Choi YS, Yang JA, Yusuf I, Johnston RJ, Greenbaum J, Peters B, Crotty S. Bcl6 expressing follicular helper CD4 T cells are fate committed early and have the capacity to form memory. J Immunol. 2013;190:4014-4026.  [PubMed]  [DOI]
8.  Ise W. Development and function of follicular helper T cells. Biosci Biotechnol Biochem. 2016;80:1-6.  [PubMed]  [DOI]
9.  王 丽芳, 张 宇, 邓 晖. 滤泡辅助性 T 细胞的多发调控研究进展. 中国免疫学杂志. 2016;32:1400-1404.  [PubMed]  [DOI]
10.  Costantino AB, Acosta CDV, Onetti L, Mussano E, Cadile II, Ferrero PV. Follicular helper T cells in peripheral blood of patients with rheumatoid arthritis. Reumatol Clin. 2017;13:338-343.  [PubMed]  [DOI]
11.  Zhang CJ, Gong Y, Zhu W, Qi Y, Yang CS, Fu Y, Chang G, Li Y, Shi S, Wood K. Augmentation of Circulating Follicular Helper T Cells and Their Impact on Autoreactive B Cells in Myasthenia Gravis. J Immunol. 2016;197:2610-2617.  [PubMed]  [DOI]
12.  Shin D, Kim DS, Kim SH, Je JH, Kim HJ, Young Kim D, Kim SM, Lee MG. Decreased PD-1 positive blood follicular helper T cells in patients with psoriasis. Arch Dermatol Res. 2016;308:593-599.  [PubMed]  [DOI]
13.  Wang Z, Wang Z, Diao Y, Qian X, Zhu N, Dong W. Circulating follicular helper T cells in Crohn's disease (CD) and CD-associated colorectal cancer. Tumour Biol. 2014;35:9355-9359.  [PubMed]  [DOI]
14.  Thomas T, Chandan JS. Multidisciplinary management: Inflammatory bowel disease. Br Dent J. 2017;222:4-5.  [PubMed]  [DOI]
15.  何 岚, 孙 兵. 滤泡辅助性T细胞分化和功能的研究进展. 生命科学. 2016;28:146-153.  [PubMed]  [DOI]
16.  段 春巧, 杨 雯雯, 雷 玲彦, 郭 惠芳, 张 明峰, 高 丽霞, 孙 超. Bcl-6/Blimp-1/IL-21 在原发性干燥综合征中的致病作用. 中国免疫学杂志. 2015;31:384-388, 392.  [PubMed]  [DOI]
17.  Remenyi B, Carapetis J, Wyber R, Taubert K, Mayosi BM; World Heart Federation. Position statement of the World Heart Federation on the prevention and control of rheumatic heart disease. Nat Rev Cardiol. 2013;10:284-292.  [PubMed]  [DOI]
18.  Toor D, Vohra H. Immune responsiveness during disease progression from acute rheumatic fever to chronic rheumatic heart disease. Microbes Infect. 2012;14:1111-1117.  [PubMed]  [DOI]
19.  Guilherme L, Ferreira FM, Köhler KF, Postol E, Kalil J. A vaccine against Streptococcus pyogenes: the potential to prevent rheumatic fever and rheumatic heart disease. Am J Cardiovasc Drugs. 2013;13:1-4.  [PubMed]  [DOI]
20.  Choi YS, Eto D, Yang JA, Lao C, Crotty S. Cutting edge: STAT1 is required for IL-6-mediated Bcl6 induction for early follicular helper cell differentiation. J Immunol. 2013;190:3049-3053.  [PubMed]  [DOI]
21.  Choi YS, Yang JA, Crotty S. Dynamic regulation of Bcl6 in follicular helper CD4 T (Tfh) cells. Curr Opin Immunol. 2013;25:366-372.  [PubMed]  [DOI]
22.  Choi YS, Kageyama R, Eto D, Escobar TC, Johnston RJ, Monticelli L, Lao C, Crotty S. ICOS receptor instructs T follicular helper cell versus effector cell differentiation via induction of the transcriptional repressor Bcl6. Immunity. 2011;34:932-946.  [PubMed]  [DOI]
23.  Yuan MJ, Wang T. Advances of the interleukin-21 signaling pathway in immunity and angiogenesis. Biomed Rep. 2016;5:3-6.  [PubMed]  [DOI]
24.  Ma CS, Suryani S, Avery DT, Chan A, Nanan R, Santner-Nanan B, Deenick EK, Tangye SG. Early commitment of naïve human CD4(+) T cells to the T follicular helper (T(FH)) cell lineage is induced by IL-12. Immunol Cell Biol. 2009;87:590-600.  [PubMed]  [DOI]
25.  Yu S, Jia L, Zhang Y, Zhong J, Yang B, Wu C. IL-12 induced the generation of IL-21- and IFN-γ-co-expressing poly-functional CD4+ T cells from human naive CD4+ T cells. Cell Cycle. 2015;14:3362-3372.  [PubMed]  [DOI]
26.  Schmitt N, Liu Y, Bentebibel SE, Munagala I, Bourdery L, Venuprasad K, Banchereau J, Ueno H. The cytokine TGF-β co-opts signaling via STAT3-STAT4 to promote the differentiation of human TFH cells. Nat Immunol. 2014;15:856-865.  [PubMed]  [DOI]
27.  Linterman MA, Pierson W, Lee SK, Kallies A, Kawamoto S, Rayner TF, Srivastava M, Divekar DP, Beaton L, Hogan JJ. Foxp3+ follicular regulatory T cells control the germinal center response. Nat Med. 2011;17:975-982.  [PubMed]  [DOI]
28.  Chung Y, Tanaka S, Chu F, Nurieva RI, Martinez GJ, Rawal S, Wang YH, Lim H, Reynolds JM, Zhou XH. Follicular regulatory T cells expressing Foxp3 and Bcl-6 suppress germinal center reactions. Nat Med. 2011;17:983-988.  [PubMed]  [DOI]
29.  Crotty S, Johnston RJ, Schoenberger SP. Effectors and memories: Bcl-6 and Blimp-1 in T and B lymphocyte differentiation. Nat Immunol. 2010;11:114-120.  [PubMed]  [DOI]
30.  Crotty S. T follicular helper cell differentiation, function, and roles in disease. Immunity. 2014;41:529-542.  [PubMed]  [DOI]
31.  Johnston RJ, Poholek AC, DiToro D, Yusuf I, Eto D, Barnett B, Dent AL, Craft J, Crotty S. Bcl6 and Blimp-1 are reciprocal and antagonistic regulators of T follicular helper cell differentiation. Science. 2009;325:1006-1010.  [PubMed]  [DOI]
32.  Johnston RJ, Choi YS, Diamond JA, Yang JA, Crotty S. STAT5 is a potent negative regulator of TFH cell differentiation. J Exp Med. 2012;209:243-250.  [PubMed]  [DOI]
33.  Vogel KU, Edelmann SL, Jeltsch KM, Bertossi A, Heger K, Heinz GA, Zöller J, Warth SC, Hoefig KP, Lohs C. Roquin paralogs 1 and 2 redundantly repress the Icos and Ox40 costimulator mRNAs and control follicular helper T cell differentiation. Immunity. 2013;38:655-668.  [PubMed]  [DOI]
34.  Nurieva RI, Podd A, Chen Y, Alekseev AM, Yu M, Qi X, Huang H, Wen R, Wang J, Li HS. STAT5 protein negatively regulates T follicular helper (Tfh) cell generation and function. J Biol Chem. 2012;287:11234-11239.  [PubMed]  [DOI]
35.  Wang H, Geng J, Wen X, Bi E, Kossenkov AV, Wolf AI, Tas J, Choi YS, Takata H, Day TJ. The transcription factor Foxp1 is a critical negative regulator of the differentiation of follicular helper T cells. Nat Immunol. 2014;15:667-675.  [PubMed]  [DOI]
36.  Xiao N, Eto D, Elly C, Peng G, Crotty S, Liu YC. The E3 ubiquitin ligase Itch is required for the differentiation of follicular helper T cells. Nat Immunol. 2014;15:657-666.  [PubMed]  [DOI]
37.  Ray JP, Marshall HD, Laidlaw BJ, Staron MM, Kaech SM, Craft J. Transcription factor STAT3 and type I interferons are corepressive insulators for differentiation of follicular helper and T helper 1 cells. Immunity. 2014;40:367-377.  [PubMed]  [DOI]
38.  Nakayamada S, Poholek AC, Lu KT, Takahashi H, Kato M, Iwata S, Hirahara K, Cannons JL, Schwartzberg PL, Vahedi G. Type I IFN induces binding of STAT1 to Bcl6: divergent roles of STAT family transcription factors in the T follicular helper cell genetic program. J Immunol. 2014;192:2156-2166.  [PubMed]  [DOI]
39.  McDonald PW, Read KA, Baker CE, Anderson AE, Powell MD, Ballesteros-Tato A, Oestreich KJ. IL-7 signalling represses Bcl-6 and the TFH gene program. Nat Commun. 2016;7:10285.  [PubMed]  [DOI]
40.  Lu KT, Kanno Y, Cannons JL, Handon R, Bible P, Elkahloun AG, Anderson SM, Wei L, Sun H, O'Shea JJ. Functional and epigenetic studies reveal multistep differentiation and plasticity of in vitro-generated and in vivo-derived follicular T helper cells. Immunity. 2011;35:622-632.  [PubMed]  [DOI]
41.  Wu T, Wieland A, Lee J, Hale JS, Han JH, Xu X, Ahmed R. Cutting Edge: miR-17-92 Is Required for Both CD4 Th1 and T Follicular Helper Cell Responses during Viral Infection. J Immunol. 2015;195:2515-2519.  [PubMed]  [DOI]
42.  Stittrich AB, Haftmann C, Sgouroudis E, Kühl AA, Hegazy AN, Panse I, Riedel R, Flossdorf M, Dong J, Fuhrmann F. The microRNA miR-182 is induced by IL-2 and promotes clonal expansion of activated helper T lymphocytes. Nat Immunol. 2010;11:1057-1062.  [PubMed]  [DOI]
43.  Kim SJ, Goldstein J, Dorso K, Merad M, Mayer L, Crawford JM, Gregersen PK, Diamond B. Expression of Blimp-1 in dendritic cells modulates the innate inflammatory response in dextran sodium sulfate-induced colitis. Mol Med. 2015;20:707-719.  [PubMed]  [DOI]
44.  Won HY, Jang EJ, Lee K, Oh S, Kim HK, Woo HA, Kang SW, Yu DY, Rhee SG, Hwang ES. Ablation of peroxiredoxin II attenuates experimental colitis by increasing FoxO1-induced Foxp3+ regulatory T cells. J Immunol. 2013;191:4029-4037.  [PubMed]  [DOI]