修回日期: 2013-12-30
接受日期: 2014-01-08
在线出版日期: 2014-02-18
目的: 探讨不同菌型幽门螺杆菌(Helicobacter pylori, H. pylori)感染消化性溃疡(peptic ulcer, PU)患者血清白介素10(interleukin-10, IL-10)、肿瘤坏死因子-α(tumor necrosis factor-α, TNF-α)的表达.
方法: 随机选择经胃镜检查诊断为消化性溃疡的患者94例, 进行内镜下胃黏膜活检快速尿素酶试验检测H. pylori感染状况, H. pylori阳性者进一步抽血进行分型检测, 采用免疫印迹法检测血清H. pylori CagA、VacA、UreB、UreA等4项基因抗体; 所有受检者均予抽血检测血清IL-10、TNF-α的含量.
结果: H. pylori感染状况: 94例消化性溃疡中H. pylori阳性病例84例, 其中十二指肠球部溃疡56例, 胃溃疡28例, H. pylori阴性病例10例; Ⅰ型H. pylori感染64例(十二指肠球部溃疡44例, 胃溃疡20例); Ⅱ型H. pylori感染20例(十二指肠球部溃疡12例, 胃溃疡8例). 血清IL-10的表达状况: Ⅰ型H. pylori感染组检测值(31.51 pg/mL±11.58 pg/mL)略高于Ⅱ型H. pylori感染组(22.02 pg/mL±13.50 pg/mL), 统计学比较无明显差异(P>0.05), 但明显高于H. pylori阴性组检测值(18.87 pg/mL±6.45 pg/mL), 统计学比较有显著差异(P<0.05); Ⅱ型H. pylori感染组检测值与H. pylori阴性组比较无明显差异(P>0.05). Ⅰ型H. pylori感染及Ⅱ型H. pylori感染组中十二指肠球部溃疡组检测值(32.25 pg/mL±19.33 pg/mL及18.57 pg/mL±8.46 pg/mL)与胃溃疡组检测值(29.86 pg/mL±14.80 pg/mL及27.20 pg/mL±8.12 pg/mL)比较无明显差异. 血清TNF-α的表达状况: Ⅰ型H. pylori感染组及Ⅱ型感染组的检测值(42.66 pg/mL±11.41 pg/mL及28.67 pg/mL±8.27 pg/mL)与H. pylori阴性组(11.24 pg/mL±4.31pg/mL)比较均明显增高(P<0.05); Ⅰ型H. pylori感染组与Ⅱ型感染组比较明显升高(P<0.05); Ⅰ型H. pylori感染组中十二指肠球部溃疡组检测值(47.13 pg/mL±10.20 pg/mL)明显高于胃溃疡组检测值(32.85 pg/mL±7.28 pg/mL)(P<0.05); Ⅱ型H. pylori感染组中十二指肠球部溃疡组检测值(28.83 pg/mL±11.38 pg/mL)与胃溃疡组检测值(28.42 pg/mL±3.79 pg/mL)比较无明显差异.
结论: Ⅰ型H. pylori感染是消化性溃疡主要致病因素; 血清IL-10的表达在Ⅰ型H. pylori感染明显增高, 但在不同菌型H. pylori感染及不同部位的溃疡方面均无明显差异; 血清TNF-α的表达在Ⅰ型及Ⅱ型H. pylori感染均明显增高, 尤见于Ⅰ型H. pylori感染, 且在Ⅰ型H. pylori感染十二指肠球部溃疡明显高于胃溃疡.
核心提示: Ⅰ型幽门螺杆菌(Helicobacter pylori, H. pylori)感染是消化性溃疡主要致病因素; 血清白介素10(interleukin-10, IL-10)的表达在Ⅰ型H. pylori感染明显增高, 血清肿瘤坏死因子-α(tumor necrosis factor-α, TNF-α)的表达在Ⅰ型及Ⅱ型H. pylori感染均明显增高, 尤见于Ⅰ型H. pylori感染.
引文著录: 游海梅, 胡团敏. IL-10、TNF-α在不同菌型幽门螺杆菌感染消化性溃疡中的表达. 世界华人消化杂志 2014; 22(5): 742-746
Revised: December 30, 2013
Accepted: January 8, 2014
Published online: February 18, 2014
AIM: To compare serum levels of interleukin-10 (IL-10) and tumor necrosis factor-α (TNF-α) in patients with peptic ulcer (PU) caused by different strains of Helicobacter pylori (H. pylori).
METHODS: Ninety-four patients with gastroscopically diagnosed PU were randomly selected. H. pylori infection status was detected by endoscopic gastric mucosa biopsy and rapid urease test. Antibodies against various H. pylori proteins (CagA, VacA, UreB, UreA) were detected by immunological method. The contents of serum IL-10 and TNF-α were determined in all subjects.
RESULTS: The H. pylori positive rate was 89.4% (84/94) in PU, 66.7% (56/84) in duodenal ulcer (DU) and 33.3% (28/84) in gastric ulcer (GU). Sixty-four cases (44 DU and 20 GU) were infected by typeⅠH. pylori and 20 cases (12 DU and 8 GU) were infected by type Ⅱ H. pylori. There was no significant difference in serum level of IL-10 between typeⅠH. pylori infection group and type Ⅱ H. pylori infection group (P > 0.05). Serum level of IL-10 was significantly higher in typeⅠH. pylori infection group than in H. pylori negative group (P < 0.05), although there was no significant difference between Type Ⅱ H. pylori infection group and H. pylori negative group (P > 0.05) or between DU and GU group with either typeⅠor type II H. pylori infection. Serum TNF-α was significantly higher in typeⅠor Ⅱ H. pylori infection group than in H. pylori negative group (P < 0.05 for both), in typeⅠH. pylori infection group than in type Ⅱ H. pylori infection group, or in DU group than in GU group with typeⅠH. pylori infection (P < 0.05), but showed no significant difference between DU group and GU group with type Ⅱ H. pylori infection.
CONCLUSION: TypeⅠH. pylori infection is a major pathogenic factor of PU. Serum IL-10 in patients with typeⅠH. pylori infection was increased obviously, but showed no significant correlation with the type of H. pylori infection or ulcer location. Serum TNF-α was increased obviously in patients with typesⅠand Ⅱ H. pylori infection, especially the former, and was obviously higher in DU patients than in GU patients with typeⅠH. pylori infection.
- Citation: You HM, Hu TM. Serum levels of IL-10 and TNF-α in patients with peptic ulcer caused by different Helicobacter pylori strains. Shijie Huaren Xiaohua Zazhi 2014; 22(5): 742-746
- URL: https://www.wjgnet.com/1009-3079/full/v22/i5/742.htm
- DOI: https://dx.doi.org/10.11569/wcjd.v22.i5.742
幽门螺杆菌(Helicobacter pylori, H. pylori)感染一直是消化系统疾病研究的热点, 尤其是对H. pylori致病因素的探讨颇多, H. pylori的致病力在于其致病因子, 主要有与定植有关的、以直接损伤胃黏膜为主的以及与炎症及免疫损伤有关的等多种致病因子, 其中以损伤胃黏膜、炎症与免疫损伤为主的CagA、VacA等致病因子更受到关注[1]. 随着研究深入发现具有CagA、VacA基因的H. pylori致病力更强, 因而根据CagA、VacA基因的存在将H. pylori进行分型, 本文旨在探讨血清白介素10(interleukin-10, IL-10)、肿瘤坏死因子-α(tumor necrosis factor-α, TNF-α)在不同基因型H. pylori感染消化性溃疡患者中的表达.
随机选择2012-01/2013-01因上腹部不适就诊于我院消化内科门诊及住院的患者, 经胃镜检查诊断为消化性溃疡(peptic ulcer, PU)94例, 年龄19-63岁, 平均年龄39.26岁±11.88岁, 男60例, 女34例. 经胃黏膜活检快速尿素酶试验检测H. pylori阳性的患者84例, 其中十二指肠球部溃疡(duodenal ulcer, DU)56例, 胃溃疡(gastric ulcer, GU)28例, H. pylori阴性者10例. 所有入选者均于就诊前2 mo内未接受过任何治疗, 且通过血常规、生化、彩超等检查排除其他炎症性疾病及肿瘤; 根据H. pylori感染情况分为Ⅰ型H. pylori感染消化性溃疡组、Ⅱ型H. pylori感染消化性溃疡组及H. pylori阴性消化性溃疡组.
1.2.1 血清H. pylori CagA、VacA、UreB、UreA基因抗体检测: 采集H. pylori阳性患者静脉血4 mL, 经3000 r/min离心, 用免疫印迹法测定其血清中H. pylori CagA、VacA、UreB、UreA基因抗体. 测定药盒由深圳市伯劳特生物科技有限公司生产, 详细操作[将25 mL浓缩洗涤液用蒸馏水稀释至250 mL, 在放有印迹膜的反应槽中加入洗涤应用液1 mL和待检血清10 µL, 置摇床上室温(20 ℃-37 ℃)摇动30 min, 弃去反应槽液体, 在吸水纸上拍干, 加入洗涤应用液1 mL, 反复洗涤3次, 最后在吸水纸上拍干, 在反应槽中加入洗涤应用液0.5 mL和酶联试剂10 µL, 置摇床上摇动30 min, 弃去反应槽液体, 洗涤应用液反复洗涤3次, 在吸水纸上拍干, 在反应槽中加入显色剂0.5 mL, 摇床上摇动5 min, 显色]及结果判定(CagA、VacA区带中任意一种或两种同时出现为Ⅰ型, 仅UreB和UreA区带中任意一种或两种同时出现, 而未见CagA、VacA区带为Ⅱ型)按说明书进行.
1.2.2 血清IL-10、TNF-α含量检测: 抽取所有受检者静脉血4 mL, 经3000 r/min离心, 应用ELISA法检测患者血清中IL-10、TNF-α含量. 试剂盒由上海森雄科技实业有限公司生产, 详细操作[建立标准曲线: 设标准孔8孔, 每孔中加入样品稀释液100 µL, 第一孔加标准品100 µL, 混匀后用加样器吸出100 µL, 移至第二孔, 如此反复做对数稀释至第七孔, 最后从第七孔中吸出100 µL弃去, 第八孔为空白对照; 加样: 待测品孔中每孔各加入待测品100 µL; 将反应板置37 ℃ 120 min, 洗板, 每孔中加入第一抗体工作液50 µL, 将反应板置37 ℃ 60 min, 洗板, 每孔加酶标抗体工作液100 µL, 将反应板置37 ℃ 60 min, 洗板, 每孔加入底物液100 µL, 置37 ℃暗处反应10 min, 每孔加入50 µL终止液混匀, 在450 nm处测吸光值(A值)]及结果判定(所有A值减去空白值后计算, 以标准品1000、500、250、125、62.5、31.25、15.62、0 pg/mL的A值在半对数纸上作图, 浓度为X轴, A值为Y轴, 曲线为一光滑曲线, 根据样品A值在该曲线图上查出相应IL-10、TNF-α含量)按说明书进行.
统计学处理 采用SPSS16.0统计软件进行数据处理, 数据间比较采用t检验, P<0.05为差异有统计学意义.
94例消化性溃疡中H. pylori阳性的病例84例(89.4%), 其中十二指肠球部溃疡54例(66.7%), 胃溃疡28例(33.3%), H. pylori阴性病例10例(10.6%); H. pylori基因抗体表达分别为CagA 64例(76.2%)、VacA 48例(57.1%)、UreA 72例(85.7%)、UreB 80例(95.2%), 根据H. pylori分型标准, CagA、VacA基因其中一项或两项同时阳性为Ⅰ型, 否则为Ⅱ型; 结果表明Ⅰ型H. pylori感染64例(76.2%)(十二指肠球部溃疡44例, 胃溃疡20例); Ⅱ型H. pylori感染20例(23.8%)(十二指肠球部溃疡12例, 胃溃疡8例).
IL-10的表达水平在Ⅰ型H. pylori感染组检测值略高于Ⅱ型H. pylori感染组, 统计学比较无明显差异(P>0.05), Ⅰ型H. pylori感染组明显高于H. pylori阴性组, 统计学比较有显著差异(P<0.05); Ⅱ型H. pylori感染组与H. pylori阴性组比较无明显差异(P>0.05). TNF-α的表达水平在Ⅰ型H. pylori感染组及Ⅱ型感染组与H. pylori阴性组比较均明显升高(P<0.05); Ⅰ型H. pylori感染组与Ⅱ型感染组比较明显升高(P<0.05)(表1).
IL-10的表达水平在Ⅰ型H. pylori感染及Ⅱ型H. pylori感染十二指肠球部溃疡组与胃溃疡组比较无明显差异. TNF-α的表达水平在Ⅰ型H. pylori感染十二指肠球部溃疡组明显高于胃溃疡组(P<0.05); Ⅱ型H. pylori感染十二指肠球部溃疡组与胃溃疡组比较无明显差异(P>0.05)(表2).
分组 | Ⅰ型H. pylori感染 | Ⅱ型H. pylori感染 | ||
IL-10 | TNF-α | IL-10 | TNF-α | |
十二指肠球部溃疡 | 32.25±19.33 | 47.13±10.20 | 18.57±8.46 | 28.83±11.38 |
胃溃疡 | 29.86±14.80 | 32.85±7.28a | 27.20±8.12 | 28.42±3.79 |
大量的研究表明炎症免疫反应是H. pylori感染黏膜损伤的重要病理生理机制, 其可导致宿主出现细胞免疫应答, 胃黏膜CD4+ T细胞升高, 其亚型TH1、TH2可分泌多种细胞因子, 其中TH1分泌TNF-α等促炎因子, TH2分泌IL-10等抗炎因子[2-5]; 当促炎和抗炎因子释放失衡时可导致胃黏膜炎症损伤, 参与溃疡的发生发展. 研究表明CagA/VacA可引起胃黏膜CD4+ T淋巴细胞升高, IL-10、TNF-α分泌升高[6-8].
IL-10是一种重要免疫调节细胞因子, 主要由TH2淋巴细胞分泌, 可通过自分泌或旁分泌方式发挥作用, 下调多种免疫细胞的活性, 其可抑制TH1淋巴细胞因子(TNF-α、IFN-g、IL-8等)的合成及其活性[9-10], 发挥其抗炎作用. 生理情况下, TH1和TH2免疫应答间通过其分泌的细胞因子交互负反馈的调节使TH1细胞和TH2细胞处于相对平衡状态[11], H. pylori感染者存在增强的TH2免疫应答和抑制的TH1免疫应答[12]; H. pylori感染后可引起TH2免疫增强, 通过低调节免疫/炎症反应来抑制炎症过程, 从而减轻组织损伤, 同时TH1应答减弱, 导致H. pylori感染成为慢性感染, 有研究表明CagA蛋白可能参与诱导宿主免疫耐受的形成和慢性感染的迁延不愈[13]; 长期持续的H. pylori感染又可加重TH1细胞免疫应答, 使TNF-α等促炎因子分泌增加; TNF-α是一种重要的促炎因子, 可诱导血管内皮细胞表达细胞间黏附分子-1和分泌IL-1、IL-8等炎症因子, 通过上调中性粒细胞及内皮细胞上黏附分子的表达引起中性粒细胞移动, 诱导中性粒细胞黏附及白细胞穿出血管壁, 造成胃黏膜内皮细胞的损伤, 使血流减少; 因胃黏膜血流在胃黏膜屏障的防御机制中至关重要, 从而造成胃黏膜损伤[14], TNF-α亦可提高细胞单核细胞趋化因子1的分泌, 促进免疫炎症反应进展[15].
本研究结果显示H. pylori感染消化性溃疡中以Ⅰ型H. pylori感染为主, 表明Ⅰ型H. pylori感染是消化性溃疡的主要致病因子. 血清IL-10检测值在Ⅰ型与Ⅱ型H. pylori感染消化性溃疡之间比较无明显差异, 但在Ⅰ型H. pylori感染组明显高于H. pylori阴性组, 表明Ⅰ型H. pylori感染与Ⅱ型H. pylori感染患者机体的防御机制是一样的, 都可引起细胞免疫应答, 但Ⅰ型H. pylori感染引起的机体免疫应答反应更强, 表现为抗炎因子IL-10的明显增高, 有利于抑制炎症反应. 血清IL-10水平在Ⅰ型H. pylori感染的十二指肠球部溃疡与胃溃疡之间无明显差异, 表明IL-10的表达与Ⅰ型H. pylori感染有关, 但与溃疡部位无明显相关性, 后者与王如华等[16]研究一致.
血清TNF-α的表达, 在Ⅰ型及Ⅱ型H. pylori感染组的检测值均高于H. pylori阴性组; 且Ⅰ型H. pylori感染组高于Ⅱ型H. pylori感染组; Ⅰ型H. pylori感染组中十二指肠球部溃疡者明显高于胃溃疡者(P<0.05); Ⅱ型感染组无明显差异; 其结果提示H. pylori感染时机体的炎症免疫反应增强, 尤其是Ⅰ型H. pylori感染, TH1细胞免疫应答增强较Ⅱ型H. pylori感染更为显著, 更能促进TNF-α分泌增加, 引起黏膜炎症加重, 破坏了黏膜的防御和修复功能, 导致溃疡的形成. 因而我们认为Ⅰ型H. pylori感染是引起十二指肠球部溃疡的重要攻击因子, 由于Ⅰ型H. pylori通过促进TNF-α的分泌明显增强了攻击因素, 其直接或间接作用于胃窦D、G细胞促进胃酸分泌, 同时引起十二指肠炎症, 故在十二指肠球部溃疡血清TNF-α的表达水平明显高于胃溃疡, 表明TNF-α的表达水平与H. pylori感染, 尤其是Ⅰ型H. pylori感染密切相关, 且与溃疡部位有关.
总之, 在消化性溃疡的发生发展过程中, H. pylori感染, 血清IL-10、TNF-α的表达, 各自扮演重要角色, H. pylori感染, 尤其是Ⅰ型H. pylori感染是消化性溃疡发病的重要因素, 机体炎症免疫机制的失调, 抗炎因子IL-10与促炎因子TNF-α的失衡, 是H. pylori感染消化性溃疡的重要发病机制, 尤其是Ⅰ型H. pylori感染时血清IL-10及TNF-α均明显增高, 后者更为明显, 尤见于十二指肠球部溃疡.
幽门螺杆菌(Helicobacter pylori, H. pylori)感染一直是消化系统疾病研究的热点, 尤其是对H. pylori致病因素的探讨颇多, 其中以损伤胃黏膜、炎症与免疫损伤为主的CagA、VacA等致病因子更受到关注, 因而根据CagA、VacA基因的存在将H. pylori进行分型. 故本文就血清白介素10(interleukin-10, IL-10)、肿瘤坏死因子-α(tumor necrosis factor-α, TNF-α)在不同菌型H. pylori感染消化性溃疡中的表达进行探讨.
黄缘, 教授, 南昌大学第二附属医院消化内科, 江西省分子医学重点实验室
H. pylori的致病因素是目前研究的热点之一, 特别是以损伤胃黏膜、炎症及免疫损伤为主的CagA、VacA基因. CagA、VacA基因如何通过炎症反应参与消化系统疾病的发生发展令人关注.
Zalewska-Ziob等研究表明CagA/VacA可引起胃黏膜CD4+ T淋巴细胞升高, IL-10、TNF-α分泌升高. KIDD等研究表明TH1和TH2免疫应答间通过其分泌的细胞因子交互负反馈的调节使TH1细胞和TH2细胞处于相对平衡状态. 袁建芬等研究表明H. pylori感染者存在增强的TH2免疫应答和抑制的TH1免疫应答.
H. pylori感染致炎症因子IL-10、TNF-α升高已得到公认, 但关于IL-10、TNF-α在H. pylori不同菌型感染消化性溃疡中的表达尚未见报道, 本文的创新点在于明确了IL-10、TNF-α在不同菌型H. pylori感染消化性溃疡中的差异, 以及在不同菌型H. pylori感染十二指肠球部溃疡与胃溃疡中的差异.
本文选题好, 课题设计合理, 结果可信, 有一定的临床意义.
编辑:郭鹏 电编:鲁亚静
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