修回日期: 2006-10-08
接受日期: 2006-10-11
在线出版日期: 2007-01-08
目的: 探讨含CD80的乙肝病毒小基因嵌合DNA疫苗的免疫应答.
方法: 以乙肝病毒小基因嵌合DNA疫苗pcHBV-CD80(含CMV启动子、HBV-preS2片段、HBV-C片段和CD80)、pcHBV (含CMV启动子、HBV-preS2片段、HBV-C片段), 以及质粒pcDNA-CD80、pcDNA3.1和生理盐水, im免疫小鼠2次(间隔2 wk), 末次接种后2 wk时检测特异性抗体、γ-IFN水平和淋巴细胞转化率.
结果: 质粒pcHBV-CD80和pcHBV免疫后均可检测到特异性的抗体, 抗-preS2在pcHBV-CD80组和pcHBV组分别为15125.52 nkat/L和14463.56 nkat/L; 抗-HBc在pcHBV-CD80组和pcHBV组分别为7607.35 nkat/L和7711.21 nkat/L, 两组间无明显差异; 但pcHBV-CD80更能增加γ-IFN的产生(1266.7 ng/L vs 986.3 ng/L, P<0.01), 并增强免疫小鼠的激淋巴细胞转化.
结论: 含CD80的乙肝病毒小基因嵌合DNA疫苗可诱导特异性的体液免疫和细胞免疫应答.
引文著录: 张建军, 杨向东, 史小玲, 袁志平, 王超. 小鼠对乙肝病毒小基因嵌合DNA疫苗免疫应答. 世界华人消化杂志 2007; 15(1): 61-63
Revised: October 8, 2006
Accepted: October 11, 2006
Published online: January 8, 2007
AIM: To investigate the immunologic response to pcHBV-CD80, a hepatitis B virus (HBV) small gene chimeric DNA vaccine containing CD80, in mice.
METHODS: Five randomly divided mouse groups were inoculated twice at a 2-week interval by intramuscular injection with pcHBV-CD80 (containing HBV-preS2 120-134, core 47-56, core 57-76, core 170-180 and human CD80 genes), pcHBV (containing HBV-preS2 120-134, core 47-56, core 57-76 and core 170-180 genes), pcDNA-CD80 (containing human CD80 gene), pcDNA3.1(empty plasmid), and normal saline, respectively. The levels of specific antibodies, interferon-γ (IFN-γ) and the rate of lymphocyte transformation in the mice were detected.
RESULTS: Both plasmids pcHBV-CD80 and pcHBV induced the production of specific antibodies, and the levels of anti-preS2 and anti-HBc were not significantly different between the former two groups (anti-preS2: 15125.52 nkat/L vs 14463.56 nkat/L; anti-HBc: 7607.35 nkat/L vs 7711.21 nkat/L; both P > 0.05). However, pcHBV-CD80 had a higher efficacy in increasing the production of γ-IFN (1266.7 ng/L vs 986.3 ng/L, P < 0.01) and lymphocyte transformation rate than pcHBV did.
CONCLUSION: HBV small gene chimerical DNA vaccine containing CD80 can stimulate the specific humoral and cellular immunologic responses in mice.
- Citation: Zhang JJ, Yang XD, Shi XL, Yuan ZP, Wang C. Immunologic response to a hepatitis B virus small gene chimeric DNA vaccine in mice. Shijie Huaren Xiaohua Zazhi 2007; 15(1): 61-63
- URL: https://www.wjgnet.com/1009-3079/full/v15/i1/61.htm
- DOI: https://dx.doi.org/10.11569/wcjd.v15.i1.61
机体彻底清除受感染肝细胞内的乙肝病毒(HBV), 需要针对C抗原的细胞免疫功能, 即 CTLs的功能[1]. 我们选择已经明确之HBV preS2区主要编码B细胞表位的基因, 与C区T细胞表位编码基因相嵌合, 构建了小基因DNA疫苗, 再将共刺激因子CD80嵌合新型的疫苗, 免疫小鼠后, 研究该新型疫苗在小鼠中的体液免疫和细胞免疫应答情况.
嵌合乙肝小基因DNA疫苗pcHBV和pcHBV-CD80由本室构建, 经测序确认前者含编码HBV-preS2 120-134, Core 47-56, Core 57-76, Core 170-180位多肽的嵌合基因, 后者含上述基因和人CD80基因(另文发表); 6 wk龄、清洁级的健康小鼠C57BL/6N, 由泸州医学院实验动物中心提供, 体质量18-22 g. 随机分为(1)pcHBV-CD80疫苗组; (2)pcHBV组; (3)pcDNA-CD80组; (4)空载体pcDNA3.1组和(5)空白对照组; 每组10只, 雌雄各半; 抗-preS2和抗-HBc EIA检测试剂盒购自北京肝炎试剂研制中心; IFN-γ检测试剂盒由晶美公司提供; MTT细胞增殖试验试剂盒购自Roche公司.
取纯化后的质粒DNA 10 μL稀释至含9 g/L NaCl溶液的3 mL比色皿中, 以生理盐水为空白对照, 以A260/A280≥1.8为纯度合格要求, 稀释质粒DNA至1. 0 g/ L, -20℃保存备用. 第(1)、(2)、(3)、(4)组每只小鼠两侧股四头肌共注射100 μL(每侧50 μL) 相应质粒DNA, 第(5)组即空白对照组同法注射100 μL生理盐水; 2 wk后同法加强免疫一次.
1.2.1 抗-preS2、抗-HBc和IFN-γ的检测: 末次免疫后2 wk处死小鼠, 心脏采血, 3000 r/min离心30 min分离血清, -20℃冻存, 按北京肝炎试剂研制中心的抗-preS2和抗-HBc EIA检测试剂盒进行检测, 方法按说明书进行. IFN-γ的检测, 按晶美公司ELISA检测试剂盒说明书操作.
1.2.2 脾淋巴细胞转化实验: 于免疫后的第5周, 每组随机抽取5只小鼠, 无菌取脾, 常规方法制备脾细胞悬液, 用1640液调细胞浓度至1×1010/L时, 作ConA(5 mg/ L)刺激, 并以单纯1640培养液作对照孔; MTT(5 mg/L) 染色, 测A570, 计算刺激指数(SI):SI = ConA 刺激孔A均值/对照孔A均值.
统计学处理 组间计量资料采用校正t检验, 双侧检验, α = 0.05.
免疫后第2周, 抗-preS2在(1)和(2)组分别可检测到15 125.52±377.24 nkat/L和14 463.56±331.07 nkat/L; 抗-HBc在(1)和(2)组分别可检测到7607.35±428.59 nkat/L和7711.21±312.90 nkat/L, 两组抗体滴度无显著差异; 而(3), (4), (5)组未检测到相应抗体. IFN-γ的产生, 在不同的组间, 出现比较大的差别: (1)组平均值高达1266.7 ng/L, (2)组也平均产生了986.3 ng/L, (3)组平均533.6 ng/L, (4)组和(5)较低(表1).
(1), (2), (3), (4)和(5)组的淋巴细胞转化实验刺激指数均值分别为4.914±0.667、3.421±0.352、2.353±0.264、1.356±0.135和1.313±0.198, (1)组与其他各组有显著性差异; (2)组与(3), (4)和(5)有显著性差异; (3)组与(4)和(5)有显著性差异; 而(4)和(5)间无差异.
1970年代, 乙型肝炎(HB)病毒(HBV)的发现和HB的肆虐, 催生了HBV疫苗. 30余年来, HBV疫苗的种类已由最初单一血源HBV疫苗发展为目前的多种基因重组HBV(rHBV)疫苗[1-3], 而用于免疫治疗研究的, 则多为核酸疫苗(DNA疫苗).
蛋白质抗原抗原提呈细胞摄取后, 将被降解成8-12个氨基酸的短肽, 这些短肽带有不同的抗原表位, 分别与MHCⅠ类和MHC Ⅱ类分子结合并被提呈到细胞表面, 与MHCⅠ类分子结合的短肽激活CD8+T细胞(CTL), 与MHCⅡ类分子结合的短肽激活CD4+T细胞, 而分泌到细胞外的抗原则被表达相应抗体的B细胞捕捉, 并在Th细胞分泌淋巴因子的刺激下转化为浆细胞, 大量分泌抗体. 人体感染HBV后, 血清中病毒主要依靠特异性保护抗体, 即抗-HBs清除, 而肝细胞中的病毒, 则需要特异性细胞毒淋巴细胞(CTLs)来清除, 主要是针对HBcAg的CTLs[4-5]. 根据这个原理, 治疗慢性HBV感染的疫苗, 应该满足既能诱导体液免疫、又能激发细胞免疫. DNA疫苗, 或核酸疫苗, 应用于慢性HBV感染治疗的研究, 已经取得了初步的效果. DNA疫苗可以明显增强受试者的细胞免疫应答[6-7]. 而只含有HBcAg第18-27位氨基酸的疫苗, 也能诱导明显的T细胞应答[5], 说明只含有B细胞表位和T细胞表位的疫苗, 能够取代大分子的亚组分疫苗. 本研究选择含编码HBV-preS2 120-134, Core 47-56, Core 57-76, Core 170-180位多肽[8]的嵌合基因, 所构建的DNA疫苗, 在小鼠体内, 能够诱导出特异性抗体, 也能有效刺激γ-IFN和淋巴细胞转化. 国内赫兢等研究也发现, HBV preS2核酸疫苗的免疫接种效果, 比S核酸疫苗好[9].
有研究显示, 与乙肝疫苗强应答者相比, 无、弱应答者外周血单个核细胞(PBMC)体外对外源性rHBsAg刺激的增殖反应明显低下, PBMC 共刺激分子CD80, CD86的表达显著降低, IL-12和IL-10的产生均有所减少, 说明rHBsAg诱导的免疫应答中, 共刺激信号以及促进TH1细胞和TH2细胞增殖分化的细胞因子都明显不足[10]. 向机体APC细胞提供CD80分子, 增加表达, 应该是解决该问题的思路之一. 本研究所构建的嵌合DNA疫苗pcHBV-CD80, 尽管在诱生抗体水平, 与无CD80质粒间无差异, 但其IFN-γ水平、淋巴细胞转化方面, 明显优于无CD80质粒. 本研究显示, preS2区主要编码B细胞表位的基因, 与C区T细胞表位编码基因, 以及CD80嵌合的新型疫苗, 能够有效诱导机体体液免疫和细胞免疫应答.
我国现在HBV感染者多达1.2亿, 部分感染者可能演变为肝纤维化、肝硬化和肝癌. 机体对外周血循环中乙肝病毒的清除, 主要依靠抗-HBs; 而要彻底清除受感染肝细胞内的HBV, 则需要针对C抗原的细胞免疫功能, 即 CTLs的功能. 乙肝病毒感染慢性化或持续感染的成因, 在病毒方面, 主要是基因变异(包括S区和/或C区)导致的免疫逃避; 宿主方面的因素比较复杂, 包括HBV特异性T细胞克隆排除、病毒基因产物引起的免疫耐受、CTLs细胞不能到达之部位发生的感染等. 其中, 免疫耐受是主要原因. 所以, 打破乙肝病毒免疫耐受, 应该是彻底治愈乙肝病毒感染的有效途径.
以往对乙型肝炎DNA疫苗的研究重点, 在于筛选有效的目的基因, 以及目的基因与细胞因子嵌合后的免疫增强效应. 本文采用基因重组技术, 将乙肝小基因与Ð同刺激信号 CD80基因融合, 构建成融合乙肝DNA疫苗, 旨在提高乙肝DNA 疫苗的免疫效果, 可望通过基因免疫, 获得免疫原性强、以低剂量即可有效刺激机体产生T细胞和B细胞应答、安全可靠的新型乙肝DNA疫苗.
本文研究的内容是重要的, 也比较新, 通过研究得出了一定的数据与结果, 提供了有意义的信息. 本文具有科学性与一定的创新性.
电编: 李琪 编辑: 张焕兰
3. | 洪 源, 成 军, 董 菁, 李 克, 王 琳, 王 刚, 刘 妍. 乙型肝炎病毒HBsAg重组疫苗与表面抗原DNA疫苗诱导H-2b小鼠免疫应答的实验研究. 世界华人消化杂志. 2002;10:137-140. [DOI] |
5. | Huang CF, Lin SS, Ho YC, Chen FL, Yang CC. The immune response induced by hepatitis B virus principal antigens. Cell Mol Immunol. 2006;3:97-106. [PubMed] |
6. | Shata MT, Pfahler W, Brotman B, Lee DH, Tricoche N, Murthy K, Prince AM. Attempted therapeutic immunization in a chimpanzee chronic HBV carrier with a high viral load. J Med Primatol. 2006;35:165-171. [PubMed] [DOI] |
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