修回日期: 2004-01-09
接受日期: 2004-01-13
在线出版日期: 2004-05-15
目的: 从粪便标本中分离并鉴定SARS-CoV.
方法: 粪便浸出液接种Vero-E6细胞, 盲传至出现明显的细胞病变效应(CPE), 并能稳定传代. 采用电镜法和RT-PCR技术鉴定细胞培养物中的SARS-CoV (本实验均在BSL-3实验室完成).
结果: 大部分样本用Vero-E6细胞盲传3代后发现明显的CPE, 并能稳定传代. 电镜负染检查, 出现CPE的细胞可查见病毒颗粒; 培养物上清RT-PCR扩增均为阳性. 粪便样本直接用RT-PCR检测, 阳性率仅为50%, 细胞培养的检出率为73%.
结论: 采用细胞培养结合RT-PCR技术检测粪便标本SARS-CoV比粪便标本直接RT-PCR的阳性率高.
引文著录: 田薇, 邓亚军, 吴清发, 王绪敏, 杨玲, 张峰, 刘晨辉, 包其郁, 汪建, 杨焕明, 刘明旭. 传染性非典型肺炎患者不同病程粪便标本中SARS-CoV的分离与鉴定. 世界华人消化杂志 2004; 12(5): 1246-1248
Revised: January 9, 2004
Accepted: January 13, 2004
Published online: May 15, 2004
N/A
- Citation: N/A. N/A. Shijie Huaren Xiaohua Zazhi 2004; 12(5): 1246-1248
- URL: https://www.wjgnet.com/1009-3079/full/v12/i5/1246.htm
- DOI: https://dx.doi.org/10.11569/wcjd.v12.i5.1246
SARS冠状病毒(SARS-CoV)是一种新的冠状病毒[1-6], 经呼吸道传播, 传染性强, 潜伏期短, 死亡率高, 主要分布在人体的肺、肝等器官及全身的淋巴组织, 同时也可存在于血液和粪便[3,7].
迄今为止, 关于SARS-CoV的分离培养, 主要见于对鼻咽拭子等呼吸道样本以及尸解组织器官的病毒培养, 尚未见对患者粪便标本进行SARS-COV分离培养的报道. 我们采用体外病毒分离技术从北京佑安医院2003-05-16/06-09收集的12例患者30份标本中, 分离获得了SARS-CoV原始分离物.电镜和RT-PCR技术均证实细胞培养物中含有SARS-CoV. 现报道如下:
病例与样品: 粪便标本由北京佑安医院提供, 时间2003-05-16/06-09, 所有患者都符合WHO对SARS疑似病例的诊断定义 (http://www.who.int/csr/sars/guidelines/en). 12例SARS患者中男5例, 女7例, 27-63岁, 病程 12-65 d (从发病之日计算), 共30份粪便样本(部分样本来自同一患者的不同病程). 引物: 根据SARS-CoV BJ01株基因组序列(AY278488),设计4对引物(其中2对为巢式引物), 序列如下: SARS73: 5'CAAAACCCCAACTTTGAAAT 3'和 5'CAGAGGTGGCAACACTGTAA 3', 扩增产物长度为226 bp, SARS73巢式引物(SARS73N): 5'CTTTTATTGAGGACTTGCTCT 3'和5'ACTTCTGCGCACAAATGAG 3', 扩增产物长度118 bp; SARS81: 5'AACTCCTGGAACAATGGAAC 3'和 5'TAAGCCACATCAAGCCTACA 3', 扩增产物长度为238 bp, SARS81巢式引物(SARS81N): 5'TTCCTAGCCTGGATTATGTT 3'和 5'AGCACAAAACAAGCAAGTGT 3'扩增产物长度120 bp. 上述引物分别位于SARS冠状病毒S糖蛋白和M蛋白基因的保守区.
1.2.1 粪便样本处理: 挑取少许样本至一1.5 mL离心管中, 加入1 mL生理盐水, 振荡混匀, 室温5 000 rpm离心3 min. 取上清液140 mL用来提取病毒RNA, 其余上清通过0.22 mm滤膜过滤, 获得粪便浸出液, 用于病毒分离.
1.2.2 SARS-COV分离: Vero-E6 细胞用含100 mL/L胎牛血清的DMEM培养传代, 细胞接合度达到80-90%时, 接种粪便浸出液1 mL, 感染2 h. 随后吸出粪便浸出液, 加1 mL上述DMEM, 置CO2培养箱37 ℃培养. 2 d后每天在显微镜下观察细胞状态, 记录是否出现细胞病变效应(CPE). 如果不出现CPE, 4-6 d盲传1次. 传代至出现90 % CPE时, 收集病毒液, 转到25 cm2细胞培养瓶中放大增生. 富集足够的病毒, 保存毒种, 进行电镜鉴定.
1.2.3 电镜和RNA样本制备: 用QiAamp Viral RNA 提取试剂盒(GIAGEN产品)分别从粪便浸出液和出现CPE的细胞培养上清液中提取RNA, 用于逆转录PCR. 出现CPE的培养细胞用20-30 mL/L戊二醛固定液固定2 h, 用于电镜检查.
以上操作均在中国科学院北京基因组学研究所/北京华大基因研究中心的BSL-3实验室内进行.
1.2.4 电镜鉴定: 以30 g/L 磷钨酸溶液负染色, 透射电镜观察.
1.2.5 RT-PCR检测: 病毒RNA逆转录用Promega的Reverse Transcription System, 按说明书操作. PCR及巢式PCR按常规方法进行[2,8].
1.2.6 血清抗体的测定: 采用ELISA方法, 用酶标仪(Multiskan Ascent, Finland)测定AD450(参考波长为630 nm), IgG大于0.18, IgM大于0.16判为阳性.
从12例患者共30份标本中成功分离得到19 株原始分离物, 多数标本用Vero-E6细胞盲传3代后即出现明显的CPE(图1), 并能稳定传代. 电镜负染检查从粪便浸出液接种的病变Vero-E6细胞, 均查见病毒颗粒(图2).
临床粪便样本30份直接用RT-PCR法扩增, 其中阳性15份, 阳性率为50%(15/30);细胞培养病毒阳性19份, 经RT-PCR检测全为阳性, 阳性率为73%(19/26)(表1). 对其中12例的粪便标本和细胞培养分离物同时进行RT-PCR和巢式PCR(SARS73和SARS81引物及其相应的巢式引物), PCR反应产物的大小与预期结果完全相同.
病例 | 年龄/性别 | 取样时间 | 病程(d) | 临床样本RT-PCR结果 | 分离结果 | 分离后RT-PCR结果 | IgG | IgM | ||
5.24 | 6.3 | 5.24 | 6.3 | |||||||
03-5-16 | 24 | + | + | + | ||||||
63/女 | 03-5-20 | 28 | + | + | + | |||||
1 | 03-5-23 | 31 | + | + | + | 0.489 | ND | 0.073 | ND | |
03-5-27 | 35 | - | + | + | ||||||
03-6-03 | 42 | - | + | + | ||||||
2 | 48/女 | 03-5-16 | 27 | + | + | + | 0.242 | ND | 0.076 | ND |
03-5-16 | 32 | + | + | + | ND | ND | ND | ND | ||
3 | 03-5-20 | + | + | + | ||||||
56/女 | 03-5-16 | 36 | + | + | + | ND | ND | ND | ND | |
03-5-20 | 58 | - | + | + | ||||||
4 | 60/男 | 03-5-23 | 62 | + | NS | NS | ND | ND | ND | ND |
03-6-06 | 65 | + | + | + | ||||||
5 | 35/女 | 03-5-16 | 53 | + | + | + | 0.352 | 0.462 | 0.112 | 0.150 |
6 | 41/女 | 03-5-16 | 33 | + | + | + | ND | ND | ND | ND |
03-5-20 | 30 | - | + | + | ||||||
03-5-27 | 34 | - | + | + | ||||||
50/女 | 03-6-3 | 41 | - | - | - | |||||
7 | 48 | + | + | + | 0.711 | 1.026 | 0.054 | 0.041 | ||
03-6-6 | 51 | - | NS | NS | ||||||
03-6-9 | 54 | - | + | + | ||||||
27/男 | 03-5-27 | 12 | - | + | + | |||||
8 | 03-5-30 | 15 | - | + | + | ND | 0.127 | ND | 0.031 | |
03-6-6 | 22 | - | - | - | ||||||
03-6-09 | 25 | + | + | + | ||||||
03-5-16 | 16 | + | + | + | ||||||
9 | 48/男 | 03-5-23 | 23 | - | NS | NS | 0.061 | 0.148 | 0.057 | 0.072 |
10 | 48/女 | 03-5-30 | 62 | + | - | - | 0.529 | ND | 0.041 | ND |
11 | 48/男 | 03-5-27 | 19 | - | - | - | 0.051 | 0.115 | 0.010 | 0.016 |
03-5-30 | 19 | - | NS | NS | ||||||
12 | 30/男 | 03-6-6 | 26 | - | - | - | ND | 0.118 | ND | 0.021 |
03-6-9 | 29 | + | - | - |
在SARS患者体内的肺组织、肾脏、粪便中已发现冠状病毒[7,9], 可是从粪便中分离冠状病毒较为困难[10], 至今为止没有报道从粪便分离病毒的例子. 我们对佑安医院2003-05住院的12例临床诊断SARS患者的粪便标本进行SARS-CoV检测, 从多数标本(19/26)中成功地分离出SARS-CoV(其中包含病程长达65 d的SARS患者粪便标本), 并通过电镜形态学、血清学及RT-PCR扩增, 对分离的病原体予以鉴定. 所以SARS-CoV能否通过消化道传播, 值得进一步研究.
RT-PCR是目前用来检测SARS病原体的重要方法之一, 在我们检测的30份标本中, 粪便标本直接RT-PCR的阳性率只有50%(15/30), 经过病毒培养后阳性率为73%(19/26), 表明病毒培养可提高粪便标本SARS-COV的检出率.由于标本来自多个患者的不同病程, 病毒载量不同, 出现CPE的时间也不同. 1号患者2003-05-20的样本, 在传第二代48 h即出现CPE, 第三代后即可以接种到单层Vero细胞的培养瓶中稳定传代. 大多数样本由于病毒载量较低, 在盲传三代后方可观察到CPE . 另外传代过程中收集的病毒培养液和细胞, 须在-20 ℃反复冻融, 并吸附染毒2 h, 这是成功分离病毒的关键.
1. | 祝 庆余, 秦 鄂德, 王 翠娥, 于 曼, 司 炳银, 范 宝昌, 常 国辉, 彭 文明, 杨 保安, 姜 涛. 非典型肺 炎病例标本中新型冠状病毒的分离与鉴定. 中国生物工程杂志. 2003;23:106-112. |
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