修回日期: 2003-12-01
接受日期: 2003-12-16
在线出版日期: 2004-04-15
目的: 应用基因芯片技术对于pcDNA3.1(-)和pcDNA3.1(-)-E-18分别转染的HepG2细胞的基因表达谱进行分析, 筛选能被E-18反式调节的靶基因, 研究未知功能的HBeAg结合蛋白E-18的生物学功能.
方法: 应用酵母双杂交技术和体外免疫共沉淀技术筛选并验证HBeAg的肝细胞结合蛋白基因, 反转录聚合酶链反应(RT-PCR)技术从HepG2细胞中扩增E-18蛋白编码基因片段, 以常规的分子生物学技术构建表达载体 pcDNA3.1(-)-E-18. 以脂质体技术转染肝母细胞瘤细胞系HepG2, 提取总mRNA, 逆转录为cDNA, 与转染空白表达载体pcDNA3.1(-)的HepG2细胞进行DNA芯片分析并比较.
结果: 筛选出肝文库中HBeAg结合蛋白E-18的编码基因, 构建的表达载体经过限制性内切酶分析和DNA序列测定鉴定正确. 提取转染细胞的总mRNA并进行逆转录成为cDNA, 进行DNA芯片技术分析. 在1 159个基因表达谱的筛选中, 发现有52个基因有差异表达, 其中36种基因表达水平显著下调, 16种基因表达水平显著上调.
结论: 成功地应用DNA芯片技术筛选出HBeAg结合蛋白新基因E-18的反式调节蛋白, 证明E-18基因的表达对于肝细胞基因表达谱有显著影响.
引文著录: 陆荫英, 刘妍, 成军, 梁耀东, 陈天艳, 邵清, 王琳, 张玲霞. 乙型肝炎病毒E抗原肝细胞结合蛋白E-18调节基因的表达谱芯片研究. 世界华人消化杂志 2004; 12(4): 817-820
Revised: December 1, 2003
Accepted: December 16, 2003
Published online: April 15, 2004
AIM: To investigate the biological functions of a novel hepatitis B virus e antigen (HBeAg) binding protein E-18, and to use cDNA microarray technique to screen genes regulated by E-18.
METHODS: A novel gene E-18 coding for HBeAg was screened and identified by using yeast two-hybrid system 3 and co-immunoprecipitation technique. The E-18 coding DNA fragment was amplified by reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) technique from HepG2 cell. The expressive vector of pcDNA3.1-E-18 was constructed by routine molecular biological methods. The HepG2 cells were transfected with pcDNA3.1(-) and pcDNA3.1-E-18, respectively by using lipofectamine. The total RNA was isolated and reverse transcribed. The cDNA of each sample were subjected to microarray screening with 1 152 cDNA probes and analyzed by bioinformatics.
RESULTS: E-18 cDNA sequence was obtained and identified by yeast two-hybrid screening and bioinformatics analysis. The expressive vector was constructed and confirmed by DNA sequencing analysis and restriction enzyme digestion. High quality mRNA and cDNA of transfected HepG2 cells had been prepared and successful microarray screening conducted. From the scanning results, there were 52 differential expression genes, of which 36 genes were down-regulated, and 16 genes were up-regulated.
CONCLUSION: Microarray technique is successfully used to screen the genes trans-regulated by E-18. The expression of E-18 protein affects the expression spectrum of HepG2 cell.
- Citation: Lu YY, Liu Y, Cheng J, Ling YD, Chen TY, Shao Q, Wang L, Zhang LX. Screening and identification of genes trans-regulated by a novel HBeAg binding protein E-18 with microarray assay. Shijie Huaren Xiaohua Zazhi 2004; 12(4): 817-820
- URL: https://www.wjgnet.com/1009-3079/full/v12/i4/817.htm
- DOI: https://dx.doi.org/10.11569/wcjd.v12.i4.817
乙型肝炎病毒e抗原(HBeAg)在临床上作为判断HBV活动性复制的指标之一, 普遍认为他是一种免疫耐受因子, 调节乙型肝炎的免疫发病机制[1-4]. 但HBeAg与肝细胞之间的相互作用以及作用后产生的效应, 目前研究较少且没有明确的结果, 因此寻找HBeAg与肝细胞间的相互作用蛋白, 并进一步明确其间的作用机制、作用效应, 有助于发现新的HBV感染防治方法. 我们用酵母双杂交技术和体外免疫共沉淀技术筛选并验证了一个未知功能的HBeAg结合蛋白基因E-18的存在, 并进一步用基因表达谱芯片技术筛选能被E-18反式调节的蛋白基因, 为全面深入了解E-18的功能及其在HBV致肝细胞损伤中的作用研究奠定基础.
HepG2细胞及感受态大肠杆菌JM109(本室保存), 酵母双杂交系统-3试剂盒及相关试剂、PCR-Select cDNA Subtraction试剂盒、50碢CR Enzyme Mix、Advantage PCR Cloning试剂盒(Clontech); pcDNA3.1(-)真核表达载体(Invitrogen); Lipofectamine PLUS 转染试剂(Gibco), mRNA Purification试剂盒(Amersham Pharmacia Biotech), High Pure PCR Product Purification试剂盒(Boehringer Mannheim), T7、SP6通用引物及pGEM-Teasy载体(Promega), Taq DNA 聚合酶、T4 DNA连接酶、EcoR I、BamH I和Pst I等限制性内切酶购于Takara生物公司, 新基因E-18扩增引物(P1 5'-GAA TTC ATG TCC AGG TGG ACT CTG AG-3', P2 5'-CTC GAG TCA AAA GTC CAC AAA ACT GC-3')的合成及DNA测序由上海博亚公司承担.
1.2.1 HBeAg肝细胞结合蛋白E-18的酵母双杂交筛选及鉴定: 应用酵母双杂交技术筛选HBeAg肝细胞结合蛋白的研究原理、方法、操作步骤以及E-18基因真核表达载体的构建等参考相关的研究论文[5-13].
1.2.2真核表达载体及细胞转染: E-18蛋白真核表达质粒pcDNA3.1(-)-E-18由本室构建. 用Lipofectamine PLUS 转染试剂将2 g pcDNA3.1(-)-E-18及pcDNA3.1(-)空载体分别转染35 mm平皿HepG2 细胞, 48 h后收获细胞.
1.2.3 细胞mRNA提取: 使用mRNA Purification试剂盒, 直接提取转染了E-18表达质粒及空载体的HepG2细胞mRNA, 经琼脂糖凝胶电泳及分光光度计进行定性定量分析.
1.2.4 探针标记: 逆转录标记cDNA探针并纯化. Cy3-dUTP标记对照组细胞mRNA (5 g), Cy5-dUTP标记实验组细胞mRNA(5 g). 乙醇沉淀后溶解在20 L 5×SSC+2 g/L SDS杂交液中.
1.2.5 芯片制备: 包含的1 152个cDNA由上海联合基因有限公司提供, 包括原癌基因和抑癌基因、免疫调节相关基因、细胞凋亡和应激反应蛋白相关基因、信号转导相关基因等. 以通用引物进行PCR扩增, PCR产物长度为1 000-3 000 bp. 靶基因以0.5 g/L溶解于3×SSC溶液中, 用Cartesian公司的Cartesian 7 500点样仪及TeleChem公司的硅烷化玻片进行点样. 玻片经水合(2 h)、室温干燥(30 min), 紫外线(UV)交联, 再分别用2 g/L SDS、水及2 g/L的硼氢化钠溶液处理10 min, 晾干备用.
1.2.6 杂交及洗涤: 将基因芯片和杂交探针在95 ℃水浴变性5 min, 将混合探针加在基因芯片上, 置于60 ℃杂交15-17 h. 依次以2×SSC+ 2 g/L SDS、0.1×SSC + 2 g/L SDS、0.1×SSC洗涤10 min, 室温晾干.
1.2.7 检测与分析: 用General Scanning公司的ScanArray 3 000扫描芯片. 用预先选定的内参照基因(24条管家基因, 每个基因点2个点, 共48个点)对Cy3和Cy5的原始提取信号进行均衡和修正. 用ImaGene 3.0软件分析Cy3、Cy5两种荧光信号的强度, 计算Cy5/Cy3比值. 阳性结果判断: Cy5/Cy3大于2.0, 红色荧光, 显示表达增强; Cy5/Cy3小于0.5, 为绿色荧光, 显示表达减弱.
筛选出HBeAg结合蛋白新基因E-18[17], 免疫共沉淀技术再次证实.
E-18蛋白真核表达质粒pcDNA3.1(-)- E-18构建成功, 经相应的限制性内切酶消化鉴定正确.
总RNA的吸光度A260/A280大于1.89, 热稳定实验70 ℃保温1 h与-20 ℃ 1 h电泳条带比较, 显示28 S条带无明显降解, 电泳结果证实已抽提高纯度的总RNA. mRNA主要集中于0.9-4.0 kb的连续条带.
在基因芯片的扫描分析中, 如果荧光染料的Cy5/Cy3比值在2.000以上, 就判断为E-18蛋白的上调基因. 研究发现有16种基因的表达水平上调(表1), 36种基因表达水平下调(表2).
基因种类 | GenBank号(NM) |
博来霉素水解酶 | 000386 |
DNA依赖蛋白酶催化亚基 | U47077 |
苹果酸脱氢酶 | 005917 |
cAMP依赖蛋白激酶 | 002736 |
磷脂酶B | 006330 |
焦磷酸酶 | 021129 |
鲨烯环氧酶 | 003129 |
遍在蛋白特异性蛋白酶1 | 003368 |
遍在蛋白整合酶E2D | 003340 |
C5类固醇脱氢酶 | 014814 |
平滑肌细胞相关蛋白-3 | AB01473 |
维生素A反应素 | 005215 |
TGF-受体 | D50683 |
鸟苷酸环化酶3 | 003276 |
染色体分离基因-1 | 001316 |
酪蛋白激酶1 | 001892 |
FKBP相关蛋白 | 053274 |
胸腺素 | BD017169 |
选择素2 | 003591 |
CGI-107蛋白 | 016045 |
cofilin亚型1 | AF134802 |
NCK-相关蛋白 | 013436 |
附加素A4 | 001153 |
podocalyxin | 005397 |
细胞分裂周期素23 | 004661 |
mastermind | 014757 |
CD53抗原 | 000560 |
视网膜母细胞瘤结合蛋白 | AJ243706 |
结直肠癌突变基因 | 006407 |
结直肠癌缺失基因 | 002387 |
P53结合蛋白-1 | 005657 |
氯化物细胞内途径蛋白4 | 013943 |
钙黏蛋白相关蛋白 | 004389 |
未知基因KIAA0107 | 006918 |
未知基因KIAA1641 | 025190 |
未知基因MGC: 9535 | 000857 |
基因种类 | GenBank号(NM) |
谷胱甘肽过氧化物酶 | 001509 |
Na、K-ATP酶 | D00099 |
组织蛋白酶E | 001910 |
胰岛素样生长因子 | X57025 |
RNA聚合酶II | 002695 |
EDRK富集因子2 | 005770 |
金属硫蛋白 | 005950 |
肌糖蛋白1G | 000232 |
G蛋白通路抑制因子1 | 004172 |
prosaposin | 002778 |
胞膜糖蛋白 | 007002 |
局限性小肠结肠炎因子 | 016353 |
未知蛋白 | AK055991 |
未知蛋白 | AK000383 |
未知蛋白 | AK025912 |
未知蛋白 | AF090094 |
HBeAg在HBV感染形成的免疫耐受过程中起着关键作用, 是研究有效防治乙型肝炎病毒(HBV)感染的关键点之一[14-18]. 通过酵母双杂交技术和体外免疫共沉淀技术, 我们发现并验证了肝细胞中与HBeAg有相互作用未知蛋白E-18. 为研究E-18的生物学功能, 用基因表达谱芯片技术对新蛋白E-18作了初步的研究, 发现受其影响表达水平改变的基因, 以期从中找出线索, 为深入研究E-18的具体生物学功能奠定基础[19-21].
构建pcDNA3.1(-)-E-18真核表达载体, 将空载体作为对照共同转染HepG2细胞, 应用基因表达谱芯片, 发现E-18的表达可使HepG2细胞中36种基因的表达水平下调, 16种基因表达水平上调. 在差异表达的基因中包括各种参与氧化还原反应的酶类(Na、K-ATP酶、谷胱甘肽过氧化物酶、苹果酸脱氢酶、磷脂酶B、焦磷酸酶、鲨烯环氧酶、C5类固醇脱氢酶)、细胞信号转导和细胞周期相关蛋白基因(G蛋白通路抑制因子1、TGF-1受体、鸟苷酸环化酶3、酪蛋白激酶1、cAMP依赖蛋白激酶)、免疫反应调节蛋白基因(FKBP相关蛋白、胸腺素、选择素2)及肿瘤发生相关基因(视网膜母细胞瘤结合蛋白、结直肠癌突变基因、结直肠癌缺失基因、p53结合蛋白-1)等及未知基因.其中Prosaposin(多聚顺反子polycistronic)为含511个氨基酸的糖蛋白, 存在于各种组织和体液中, 同时以分泌型和膜整合型2种形式存在, 是saposin的前体, 含有80个固定的氨基酸残基是结构域, 有相同的半胱氨酸残基、糖基化作用位点、超螺旋区及蛋白裂解位点, 能激活鞘类磷脂溶酶体水解酶, 具有特异性水解酸性神经鞘磷酯的活性, 还能刺激神经节苷脂(GM)1-半乳糖苷酶的活性, 推测在体外具有结合和运送神经节苷脂的活性[22-24], E-18对其起上调作用. FKBP是亲免素家族中的一员, 是免疫抑制剂藤霉素(FK-506)和拉帕霉素的细胞内受体[25], E-18下调其表达, 提示E-18可能通过影响免疫抑制剂与FKBP结合来调节免疫. 肌动蛋白解聚因子(actin-depolymerizing factor, ADF/cofilin)是肌动蛋白相关蛋白家族中的成员, 是肌动蛋白生长锥的一个重要调节因子, 对于肌动蛋白在各种细胞中的迅速转位非常重要, 在生长椎中与肌动蛋白协同存在, 协助轴突的延伸及细胞运动, 其活性受LIM激酶和磷酸酯酶的可逆性磷酸化作用调节[26-27]. NCK相关蛋白1(NCKAP1)是Nap1类似物, 位于人类2q32染色体上, 能诱导神经元细胞的凋亡[28]. 黏附素4属于黏附素家族, 是一类钙依赖的磷脂结合蛋白, 功能未完全明了, 其中部分成员是膜相关因子, 参与胞饮和胞吐过程. 黏附素4与家族其他成员间约有45%-59%的同源性, 有相同的大小及内含子、外显子, 编码蛋白具有ATP结合活性, 在体内有抗凝血和抑制磷脂酶A2的活性[29,30]. Mastermind是一种Notch通路中的重要蛋白质, 决定着细胞的命运, 他可与细胞内Notch受体结合形成复合物, 并能增加Notch诱导基因的表达, 有证据表明该蛋白可能在Notch通路中作为一种转录的协同激活因子起效, 还有报道Mastermind还是Notch增强子复合物从染色体上解聚激活转录过程中的调控元件=. 氯化物细胞内途径蛋白通过离子泵作用调节囊泡内pH值, 通过介导氯的渗透维持大的细胞内pH值[31]. E-18能下调上述基因的表达, 提示其可能通过多种途径干预细胞生理活动.
随着越来越多的未知功能蛋白质被发现, 对新蛋白的生物学功能以及他们在疾病发生、发展、转化过程中的变化规律的研究逐渐成为生命科学的热点, 同时由于新技术的不断创新, 使一系列的研究成为可能. 我们成功应用基因表达谱芯片技术对E-18新基因的反式调节基因进行了初步的研究, 为下一步的深入研究奠定了基础.
编辑: N/A
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