修回日期: 2003-03-20
接受日期: 2003-04-16
在线出版日期: 2003-08-15
N/A
引文著录: 成军, 刘妍, 王琳, 钟彦伟, 王刚. RNA干扰与抗肝炎病毒治疗前景的研究. 世界华人消化杂志 2003; 11(8): 1264-1266
Revised: March 20, 2003
Accepted: April 16, 2003
Published online: August 15, 2003
N/A
- Citation: N/A. N/A. Shijie Huaren Xiaohua Zazhi 2003; 11(8): 1264-1266
- URL: https://www.wjgnet.com/1009-3079/full/v11/i8/1264.htm
- DOI: https://dx.doi.org/10.11569/wcjd.v11.i8.1264
从基因的分子生物学角度, 病毒性肝炎也是一种基因病, 相对于正常肝细胞来说, 从肝炎患者的肝细胞中获得了肝炎病毒的基因, 因此, 病毒性肝炎的治疗也可以采取象遗传病那样的基因治疗(gene therapy)策略[1-5]. 与遗传病的基因治疗策略不同, 遗传病往往是因为某一或某些基因发生缺陷, 利用基因治疗技术进行补充或者校正; 而病毒性肝炎的基因治疗, 往往是需要采取另外的策略, 即阻断有害的病毒的基因表达的策略. 因为病毒性肝炎的发病机制, 主要是进入肝细胞的肝炎病毒基因编码产生相应的肝炎病毒蛋白, 作为靶抗原激活机体的免疫应答机制, 这种原本是要清除肝细胞中肝炎病毒的正常的免疫应答机制, 却造成了持续的肝细胞的免疫损伤, 引起各种类型的肝脏疾病. 特别是乙型肝炎病毒(HBV)、丙型肝炎病毒(HCV)感染引起的慢性病毒性肝炎, 迁延不愈, 释放的各种炎症因子导致肝脏内贮脂细胞(stellate cell)的激活、转化、增生, 分泌过量的细胞外基质(ECM), 并引起肝脏纤维化的形成, 某些情况下通过复杂的生物学机制导致肝细胞的恶性转化, 引起肝细胞癌(HCC)的发生[6-10]. 因此, 从肝炎病毒引起的一系列肝脏疾病谱来看, 主要的源头就是肝细胞中肝炎病毒基因的存在, 因此采用基因治疗技术阻断肝炎病毒基因在肝细胞中的复制和表达, 是我们应该考虑的主要治疗靶点[11-16].
关于阻断肝细胞内肝炎病毒基因复制和表达的策略, 已经进行了许多的基因治疗实验研究的尝试, 如反义寡聚脱氧核糖核苷酸(ODN)、反义RNA、核酶(ribozyme)等曾经是人们关注的焦点, 以人源化单链可变区抗体(scFv)为目的基因的细胞内免疫(intracellular immunization)基因治疗技术也是非常具有吸引力的策略. 最近研究表明, RNA干扰(RNA interference)可能是进行抗肝炎病毒基因治疗的新策略[4,5].
1995年Guo et al [17]在研究美丽隐杆线虫(C. elegans)的par1基因功能时, 将par1基因的反义RNA表达载体导入到美丽隐杆线虫中, 引起par1基因的缺陷现象, 同时发现导入par1基因的有义链基因进行表达时, 也产生了par1基因的缺陷现象, 表明反义和有义RNA的表达都有类似的抑制效应, 但是机制却明显不同. Fire et al [18]对这一现象的机制进行了细致深入的研究, 比较了反义RNA、有义RNA和双连RNA(dsRNA)在美丽隐杆线虫中的抑制效应, 发现dsRNA产生至少是10倍以上的抑制靶基因表达的效果, 并将dsRNA抑制同源基因的表达的现象称为RNA干扰, 从此RNA干扰现象得到了空前的重视, 并在各种病原微生物的基因表达抑制方面进行了许多有益的尝试.
干扰RNA是生物系统在长期进化过程中形成、天然存在的防御机制之一. 当一种生物系统受到异源性病原体的入侵时, 可以自动开启属于RNase III的核糖核酸酶, 即RNA切割酶(dicer)的活性, 将入侵病原体的RNA成分, 切割处理成21-25 nt的RNA小片段, 发挥RNA干扰(iRNA)的抑制性生物学作用, 参与构筑生物系统的防御机制. 这种生物防御机制, 从低等生物到高等生物都普遍存在, 是生物系统天然存在的重要机制[19-25].
在美丽隐杆线虫中发现RNA干扰现象之后, 很快发现在许多类型的病原微生物中都存在同样的RNA干扰现象. 如果蝇、锥虫、涡虫、线虫, 以及高等的哺乳动物细胞, 甚至是人的细胞中也都发现类似的RNA干扰现象. 对其作用机制进行研究, 发现是一些22-25 nt大小dsRNA产生抑制或降解靶RNA分子的作用, 统称为小干扰RNA(small interference RNA, siRNA), 根据其发挥RNA干扰现象的dsRNA的具体长度又可以分成2类: 24-25 nt的长siRNA和21-23 nt的短siRNA. 这两种类型的siRNA都可以通过与靶mRNA分子进行序列特异性的结合、抑制与降解, 阻断或破坏靶基因的表达. 另外一种可能作用的机制就是dsRNA诱导同源基因的甲基化, 从而使目的基因表达关闭. 另外, 小分子的dsRNA同时也是很强的干扰素诱导酶如PKR、RNase L的激活剂, 可以产生类似干扰素的抗病毒效应[26-37].
有多位学者对于人免疫缺陷病毒-1(human immunodeficiency virus-1, HIV-1)的siRNA进行了研究. Jacque et al [38]根据HIV-1基因组核苷酸序列, 如长末端重复序列(long terminal repeat, LTR)、vif和nef基因, 设计了序列特异性的21 nt的siRNA, 无论是人工合成, 还是表达载体在细胞内表达的siRNA分子, 都能够在HIV-1阳性的CD4+ Hela细胞中抑制HIV-1的复制, 导致复制水平下降了30-50倍. 如果siRNA序列与结合的HIV-1序列不配对时, 这种抑制作用有显著降低. 说明siRNA与靶RNA分子之间的配对结合是非常重要的. 除了转染细胞系之外, siRNA在分离的原代HIV-1阳性的淋巴细胞中也具有明显的抑制HIV-1的复制和表达的作用. 更进一步提示了siRNA策略的实际应用前景. Novina et al [39]对于dsRNA分子对于HIV-1的抑制作用进行了研究, 针对gag基因的dsRNA在转染48 h之后, p24蛋白的表达水平显著下降, 即使在HIV-1前基因组DNA与细胞基因组已经发生整合的HIV-1细胞系中, dsRNA也具有显著的抑制HIV-1的复制和表达的作用.
脊髓灰质炎病毒(poliomyelitis virus, PMV)是一种高水平复制的RNA病毒, siRNA策略同样可以产生对于PMV的抑制效应. Gitlin et al [40]分别设计了针对PMV衣壳蛋白、聚合酶编码基因序列的siRNA, 在Hela细胞系上, 可以使PMV的复制水平下降97-99%, 说明产生了非常显著的抑制效应. Caplen et al [41]对于siRNA抑制塞姆利基森林病毒(semliki forest virus, SFV)、登革热病毒(dengue fever virus, DFV)的效果进行了研究. 证实dsRNA策略可以显著抑制C6/36细胞系中SFV、DFV的基因复制和表达.
RNA干扰策略在抗肝炎病毒治疗中首先在HCV的研究中获得了成功. McCaffrey et al [42]设计合成了针对HCV NS5B基因区的dsRNA, 当与NS5B表达载体进行共转染时, 在鼠肝细胞中观察到dsRNA对于NS5B基因的表达水平抑制率达到75%, 如果dsRNA与NS5B的表达载体进行共转染, 抑制率可以达到98%. 说明siRNA策略在抗HCV基因治疗中的应用前景. 多年来由于缺乏合适的HCV感染/转染细胞模型, 因此对于抑制HCV的研究进展缓慢. 近年来关于HCV复制子(replicon)的建立, 使得在细胞系水平上研究siRNA的效果成为可能. Randall et al [43]就利用HCV的复制子细胞模型对于dsRNA抑制HCV RNA复制的效果进行了研究. 在Huh-7细胞系中, dsRNA对于HCV RNA的复制水平具有显著的抑制作用, 而且是剂量依赖性的. 对于dsRNA作用的序列依赖性的特点进行研究, 2株HCV变异株仅有3 nt的序列差别, 只有dsRNA与作用的靶HCV RNA序列完全同源时才具有抑制作用, 因此, dsRNA对于靶基因的表达抑制具有严格的序列特异性的特点. dsRNA对于HCV RNA抑制的作用效果是指数性的, 在4 d之内, 就可以降低HCV RNA的复制水平达80倍. 导入siRNA之后, 可以使98%以上的有HCV RNA复制的细胞不再有HCV RNA的复制, 这些细胞中再也检测不到HCV的抗原表达和HCV RNA的复制. 这些研究结果表明, 基于siRNA的抗HCV 治疗是十分有希望的.
但是, 由于对siRNA的认识时间尚短, 因此目前还没 有具体的siRNA抑制乙型肝炎病毒的研究结果, 但是从目前关于HCV的部分研究结果来看, 从其他类型的病毒的抑制效果来看, siRNA还是具有希望的抗肝炎病毒治疗的新策略. 当然, 由于肝炎病毒RNA分子在体内的二级结构特点, 针对不同基因区段的siRNA的抑制作用效果也肯定有所差别, 因此针对HBV、HCV基因序列的特点, 还需要进行优化, 寻找最为有效的抑制靶点. 作为一种新型的抗肝炎病毒的可能的策略, siRNA也具有其相当明显的局限性[43]. 例如HBV和HCV基因序列高度变异, 存在明显的基因准种(quasispecies)群, 而siRNA对于靶RNA分子的识别, 又是以碱基配对方式进行的, 因此要想全面控制HBV、HCV的复制, 我们就需要无数种序列不同的siRNA分子, 显然是很难做到的. 因此, 我们还必须针对这一特点进行深入细致的研究, 克服这一困难, 使siRNA抑制靶基因的表达策略更能切合临床抗肝炎病毒治疗的需要.
1. | 刘 妍, 成 军. 丙肝病毒致肝细胞癌的分子生物学机制. 国外医学. 流行病学传染病学分册. 2000;27:10-13. |
4. | 成 军, 斯 崇文. 抗病毒基因治疗研究进展. 中华实验和临床病毒学杂志. 1993;7:436-439. |
6. | Dong J, Cheng J, Wang QH, Liu Y, Wang G, Shi SS, Xia XB, Shao Q, Si CW. The preliminary study on hepatitis B virus (HBV) quasispecies in patients with chronic HBV infection. Chin J Infect Dis. 2001;19:199-203. |
7. | 董 菁, 成 军, 王 勤环, 施 双双, 洪 源, 皇甫 竞坤, 王 刚, 李 莉, 斯 崇文. 乙型肝炎病毒逆转录酶区基因序列准种与变异研究. 解放军医学杂志. 2001;26:823-825. |
9. | 董 菁, 成 军, 王 勤环, 皇甫 竞坤, 施 双双, 张 国庆, 洪 源, 李 莉, 斯 崇文. 乙型肝炎病毒DNA序列异质性及准种特点的研究. 中华医学杂志. 2002;82:81-85. |
11. | 刘 妍, 董 菁, 皇甫 竞坤, 成 军, 韩 萍, 牟 劲松, 李 克, 钟 彦伟. 乙型肝炎病毒核心启动子区基因异质性及对其转录活性的影响. 解放军医学杂志. 2002;27:128-130. |
13. | 陆 荫英, 王 琳, 刘 妍, 于 敏, 李 克, 王 业东, 张 玲霞, 成 军. 乙肝病毒核心抗原单链抗体细胞内免疫抗乙肝病毒基因治疗研究. 世界华人消化杂志. 2002;10:765-769. |
14. | Deng H, Dong J, Cheng J, Huangfu JK, Shi SS, Hong Y, Ren XM, Li L. Quasispecies groups in the core promoter region of hepatitis B virus. Hepatobil Pancreatic Dis Int. 2002;1:392-396. |
15. | 陆 荫英, 王 琳, 刘 妍, 于 敏, 李 克, 张 玲霞, 王 业东, 成 军. 乙肝病毒表面抗原单链抗体细胞内免疫抗乙肝病毒基因治疗研究. 军医进修学院学报. 2003;24:49-51. |
17. | Guo S, Kemphues KJ. Par-1, a gene required for establishing polarity in C. elegans embryos, encodes a putative Ser/Thr kinase that is asymmetrically distributed. Cell. 1995;81:611-620. [DOI] |
18. | Fire A, Xu S, Montgomery MK, Kostas SA, Driver SE, Mello CC. Potent and specific genetic interference by double-stranded RNA in Caenorhabditis elegans. Nature. 1998;391:806-811. [PubMed] [DOI] |
19. | Siegmund D, Hadwiger P, Pfizenmaier K, Vornlocher HP, Wajant H. Selective inhibition of FLICE-like inhibitory protein expression with small interfering RNA oligonucleotides is sufficient to sensitize tumor cells for TRAIL-induced apoptosis. Mol Med. 2002;8:725-732. [DOI] |
20. | Yamamoto T, Omoto S, Mizuguchi M, Mizukami H, Okuyama H, Okada N, Saksena NK, Brisibe EA, Otake K, Fuji YR. Double-stranded nef RNA interferes with human immunodeficiency virus type 1 replication. Microbiol Immunol. 2002;46:809-817. [DOI] |
21. | Goshima G, Kiyomitsu T, Yoda K, Yanagida M. Human centromere chromatin protein hMis12, essential for equal segregation, is independent of CENP-A loading pathway. J Cell Biol. 2003;160:25-39. [PubMed] [DOI] |
22. | Carthew RW. RNA interference: the fragile x syndrome connection. Curr Biol. 2002;12:R852-R854. [DOI] |
23. | Cerutti H. RNA interference: traveling in the cell and gaining functions? Trends Genet. 2003;19:39-46. [DOI] |
24. | Seo MY, Abrignani S, Houghton M, Han JH. Small interfering RNA-mediated inhibition of hepatitis C virus replication in the human hepatoma cell line Huh-7. J Virol. 2003;77:810-812. [DOI] |
25. | Gan L, Anton KE, Masterson BA, Vincent VA, Ye S, Gonzalez-Zulueta M. Specific interference with gene expression and gene function mediated by long dsRNA in neural cells. J Neurosci Methods. 2002;121:151-157. [DOI] |
26. | Martinez MA, Clotet B, Este JA. RNA interference of HIV replication. Trends Immunol. 2002;23:559-561. [DOI] |
27. | Martinez MA, Gutierrez A, Armand-Ugon M, Blanco J, Parera M, Gomez J, Clotet B, Este JA. Suppression of chemokine receptor expression by RNA interference allows for inhibition of HIV-1 replication. AIDS. 2002;16:2385-2390. [DOI] |
28. | Hasuwa H, Kaseda K, Einarsdottir T, Okabe M. Small interfering RNA and gene silencing in transgenic mice and rats. FEBS Lett. 2002;532:227-230. [DOI] |
29. | Castanotto D, Li H, Rossi JJ. Functional siRNA expression from transfected PCR products. RNA. 2002;8:1454-1460. [DOI] |
30. | Lee SS, Lee RY, Fraser AG, Kamath RS, Ahringer J, Ruvkun G. A systematic RNAi screen identifies a critical role for mitochondria in C. elegans longevity. Nat Genet. 2003;33:40-48. [PubMed] [DOI] |
31. | Dector MA, Romero P, Lopez S, Arias CF. Rotavirus gene silencing by small interfering RNAs. EMBO Rep. 2002;3:1175-1180. [DOI] |
32. | An J, Sun Y, Sun R, Rettig MB. Kaposi's sarcoma-associated herpesvirus encoded vFLIP induces cellular IL-6 expression: the role of the NF-kappaB and JNK/AP1 pathways. Oncogene. 2003;22:3371-3385. [DOI] |
33. | Piano F, Schetter AJ, Morton DG, Gunsalus KC, Reinke V, Kim SK, Kemphues KJ. Gene clustering based on rnai phenotypes of ovary-enriched genes in C. elegans. Curr Biol. 2002;12:1959-1964. [DOI] |
34. | Surabhi RM, Gaynor RB. RNA interference directed against viral and cellular targets inhibits human immunodeficiency Virus Type 1 replication. J Virol. 2002;76:12963-12973. [PubMed] [DOI] |
35. | Adelman ZN, Sanchez-Vargas I, Travanty EA, Carlson JO, Beaty BJ, Blair CD, Olson KE. RNA silencing of dengue virus type 2 replication in transformed C6/36 mosquito cells transcribing an inverted-repeat RNA derived from the virus genome. J Virol. 2002;76:12925-12933. [DOI] |
36. | Peng Y, Zhang Q, Nagasawa H, Okayasu R, Liber HL, Bedford JS. Silencing expression of the catalytic subunit of DNA-dependent protein kinase by small interfering RNA sensitizes human cells for radiation-induced chromosome damage, cell killing, and mutation. Cancer Res. 2002;62:6400-6404. [PubMed] |
37. | Park WS, Miyano-Kurosaki N, Hayafune M, Nakajima E, Matsuzaki T, Shimada F, Takaku H. Prevention of HIV-1 infection in human peripheral blood mononuclear cells by specific RNA interference. Nucleic Acids Res. 2002;30:4830-4835. [DOI] |
38. | Jacque JM, Triques K, Stevenson M. Modulation of HIV-1 replication by RNA interference. Nature. 2002;418:435-438. [PubMed] [DOI] |
39. | Novina CD, Murray MF, Dykxhoorn DM, Beresford PJ, Riess J, Lee SK, Collman RG, Lieberman J, Shankar P, Sharp PA. siRNA-directed inhibition of HIV-1 infection. Nat Med. 2002;8:681-686. [PubMed] [DOI] |
40. | Gitlin L, Karelsky S, Andino R. Short interfering RNA confers intracellular antiviral immunity in human cells. Nature. 2002;418:430-434. [PubMed] [DOI] |
41. | Caplen NJ, Parrish S, Imani F, Fire A, Morgan RA. Specific inhibition of gene expression by small double-stranded RNAs in invertebrate and vertebrate systems. Proc Natl Acad Sci USA. 2001;98:9742-9747. [PubMed] [DOI] |
42. | McCaffrey AP, Meuse L, Pham TT, Conklin DS, Hannon GJ, Kay MA. RNA interference in adult mice. Nature. 2002;418:38-39. [PubMed] [DOI] |
43. | Randall G, Grakoui A, Rice CM. Clearance of replicating hepatitis C virus replicon RNAs in cell culture by small interfering RNAs. Proc Natl Acad Sci USA. 2003;100:235-240. [PubMed] [DOI] |